Obserwacje cech morfologicznych oraz mikro- i makrosporogenezy u mieszańców F1 Brassica napus × B. carinata zdrowych i zainfekowanych fitoplazmami w porównaniu z formami wyjściowymi

Andrzej Wojciechowski, Justyna Błoch

Akademia Rolnicza im. A. Cieszkowskiego w Poznaniu, Katedra Genetyki i Hodowli Roślin

Obserwacje cech morfologicznych

oraz mikro- i makrosporogenezy u mieszańców F

Brassica napus × B. carinata

zdrowych i zainfekowanych fitoplazmami

w porównaniu z formami wyjściowymi

The observation of morphological traits and micro- and

macrosporogenesis in F

of distant hybrids Brassica napus × B. carinata:

Comparison of healthy plants and phytoplasmas infected plants

with parental plants

Doświadczenie założono w 2005 r. na polach doświadczalnych — Poznań, Dłoń i w warunkach szklarniowych. W prezentowanej pracy analizowano tylko mieszańce F1 z krzyżowania MS-8

B. napus × B. carinata, gdyż w jednej z trzech lokalizacji (pole w Poznaniu) rośliny mieszańcowe były całkowicie porażone przez fitoplazmy. U tych roślin oraz u form wyjściowych analizowano procesy mikro- i makrosporogenezy.

Morfotyp roślin pokolenia F1 w stadium rozety w niektórych przypadkach był podobny do roślin

matecznych, a w innych był pośredni pomiędzy roślinami rodzicielskimi. W fazie kwitnienia różnice pomiędzy mieszańcami były mniejsze i były one bardziej podobne do rośliny matecznej.

Wszystkie mieszańce były męskosterylne (podobnie jak forma mateczna), a ich kwiaty były po-średnie pomiędzy formami wyjściowymi. Główną przyczyną sterylności pyłku były zaburzenia występujące w mejozie i podczas rozwoju tapetum.

Rośliny zainfekowane fitoplazmami wykazywały bardzo dużą deformację kwiatów. Słupki posia-dały znamiona podzielone na 2–3 części. Płatki korony i działki kielicha były zdeformowane i zabar-wione na kolor zielony. W komorach pylnikowych kształtował się archespor, którego komórki w większości przypadków nie wchodziły w proces mejozy. Powstałe po mejozie ziarna pyłku zamierały. Przyczyną tego zamierania było zbyt słabo rozwinięte tapetum. W zalążkach obserwowano jedynie komórki archesporialne, które nie podejmowały mejozy.

Key words: wide crosses, phytoplasmas, in vitro, microsporogenesis, macrosporogenesis The experiment was settled in 2005 in the field in two different locations (Poznań and Dłoń) and in greenhouse conditions. In this paper only F1 plants from the crossing MS-8 B. napus × B. carinata

were analysed because they were completely infected with phytoplasmas in one of three locations (in the field in Poznań). In these plants and in initial forms micro- and macrosporegenesis were analysed.

The morphology of F1 plants at the rosette stage was in some cases similar to the paternal czy

parental? forms and in some cases it was intermediate between parents. The differences between particular hybrids were lower at flowering stage and they were more similar to maternal form.

All interspecific hybrids were male sterile and their flowers were smaller compared to parental forms. The main reason of pollen sterility were disturbances in meiosis and during tapetum development.

All plants infected by phytoplasmas showed big malformation of flowers. The pistils had stigmas divided into 2–3 parts. The sepals and petals were green and their shape was deformed. In the anther chamber there was normal archespor but after meiosis the pollen grains were aborted. The reason of that abortion was not sufficient development of tapetum. In the ovules only archespor cell was observed and there were no meiotic divisions.

Wstęp

Wzrastające wymagania rynku konsumenckiego stawiają przed hodowcami roślin ciągle nowe wyzwania. Sprostać tym wyzwaniom można poprzez kreowanie nowych, lepszych odmian roślin uprawnych. Tworzenie nowych odmian opiera się w głównej mierze na korzystaniu z szeroko rozumianej genetycznej zmienności cech. Im większa jest ta zmienność, tym łatwiej można osiągnąć zakładane cele hodowlane. Zakres zmienności cech można zwiększać między innymi poprzez muta-genezę i krzyżowanie. W przypadku wielu gatunków roślin, w tym między innymi rzepaku (B. napus), krzyżowanie wewnątrzgatunkowe nie wystarcza, aby stworzyć genotyp lepszy od tego, który już znajduje się w uprawie. Z tego powodu obser-wuje się rosnące zainteresowanie pracami genetyczno-hodowlanymi nad uzyskaniem mieszańców oddalonych, będących cennym materiałem wyjściowym dla hodowli roślin.

Hodowla rzepaku ozimego nie skupia się jedynie na poprawie plonowania. Znaczącą rolę odgrywa również poszerzenie możliwości wykorzystania nasion poprzez modyfikację składu kwasów tłuszczowych i obniżenie zawartości związ-ków antyżywieniowych. Ważny przedmiot badań stanowi obniżanie zawartości włókna surowego w okrywie nasiennej, dzięki czemu można uzyskać wzrost zawartości oleju i białka w nasionach. Te cechy związane są z żółtym kolorem nasion, który występuje naturalnie u wielu gatunków z rodzaju Brassica, lecz nie u B. napus. Głównym sposobem przeniesienia tej cechy do rzepaku może być krzyżowanie oddalone rzepaku z gatunkami o żółtym lub brązowym zabarwieniu nasion (Chen i in. 1988, Rahman i in.2001, Ochodzki i Piotrowska 2002).

Tego typu krzyżowania rozpoczęto w Katedrze Genetyki i Hodowli Roślin Akademii Rolniczej w Poznaniu w 2004 roku. Wykonane krzyżowania pomiędzy otrzymaną w Katedrze męskosterylną linią rzepaku ozimego MS-8 a czterema gatunkami Brassica o żółtych i brązowych nasionach, tj. B. campestris ssp. sarson,

B. campestris ssp. pekinensis, B. carinata i B. hirta (S. alba) umożliwiły

otrzymano w przypadku, gdy formę ojcowską stanowiła B. hirta (Wojciechowski, Lewandowska 2006).

W związku z tym, że jedynie rośliny mieszańcowe powstałe w wyniku krzy-żowania B. napus var. oleifera z B. carinata cechowały się całkowitym porażeniem przez fitoplazmy w jednej z trzech lokalizacji eksperymentu, w prezentowanej pracy oceniano cechy morfologiczne oraz przebieg mikro- i makrosporogenezy u oddalonych mieszańców pokolenia F1 powstałych w wyniku tego krzyżowania,

w porównaniu z formami wyjściowymi.

Materiał roślinny i metodyka pracy

Materiał, który posłużył do badań stanowiły mieszańce pokolenia F1 jednej

spośród trzech kombinacji krzyżowań oddalonych w rodzaju Brassica, z których otrzymano nasiona, tj. MS-8 B. napus var. oleifera f. biennis (męskosterylna linia rzepaku ozimego MS-8, 2n = AACC = 38) × B. carinata (gorczyca etiopska, 2n = BBCC = 34). Powodem wykonania dokładniejszych obserwacji mieszańców z tej kombinacji krzyżowania było ich całkowite porażenie przez fitoplazmy w jednej z trzech lokalizacji eksperymentu. Mieszańce z pozostałych dwóch kombinacji krzyżowań, tj. MS-8 B. napus × B. campestris ssp. sarson (żółtonasienny rzepik jary, 2n = AA = 20) i MS-8 B. napus × B. campestris ssp. pekinensis (kapusta pekińska, 2n = AA = 20) były całkowicie wolne od fitoplazm.

Męskosterylna linia MS-8 została wyselekcjonowana w Katedrze Genetyki i Hodowli Roślin AR w Poznaniu w pokoleniu F8 międzygatunkowych mieszańców

powstałych z krzyżowania B. oleracea var. gemmifera L. (brukselka) z B. campestris ssp. chinensis (kapusta chińska) (Wojciechowski 1993). Pozostałe gatunki użyte do krzyżowania otrzymano z banku genów Horticulture Research International w Wellsbourne, Anglia.

Eksperyment założono w 2005 roku na polu doświadczalnym Katedry Genetyki i Hodowli Roślin w dwóch lokalizacjach: na Sołaczu w Poznaniu i w Rolniczym Gospodarstwie Doświadczalnym Dłoń oraz w warunkach szklarniowych.

Z kombinacji krzyżowania linii MS-8 B. napus × B. carinata analizowano 15 potomstw mieszańcowych, które powstały w wyniku zapylania 15 roślin linii MS-8 pyłkiem roślin B. carinata. Każde mieszańcowe potomstwo F1 reprezentowane

było przez minimum 30 roślin w każdej z trzech lokalizacji. Nasiona siano do doni-czek w szklarni i część roślin w fazie trzech liści wysadzono na poletkach doświad-czalnych Katedry Genetyki i Hodowli Roślin Akademii Rolniczej w Poznaniu i w RGD Dłoń, w rozstawie 35 cm między rzędami. W Poznaniu doświadczenie założono na glebie płowej, klasy bonitacyjnej IIIb kompleksu żytniego dobrego, a w Dłoni na glebie płowej, klasy bonitacyjnej II kompleksu pszennego dobrego.

W szklarni rośliny rosły w doniczkach na podłożu ogrodniczym (mieszanina torfu i ziemi uprawnej w stosunku 1 : 1).

W całym cyklu badawczym wykonano obserwacje dotyczące oceny: 1) cech morfologicznych roślin w stadium rozety,

2) cech morfologicznych roślin w stadium kwitnienia, 3) procesu mitozy,

4) procesu mikro- i makrosporogenezy oraz analizy zmian morfologiczno-roz-wojowych kwiatów roślin zaatakowanych przez fitoplazmy w oparciu o metodę parafinową.

Podczas obserwacji cech morfologicznych roślin F1 w stadium rozety

analizo-wano: kolor liści, stopień ich owłosienia, stopień pokrycia liścia warstwą woskową, obecność lub brak międzywęźli i przebarwień antocyjanowych. Określano podo-bieństwo roślin mieszańcowych do rodziców oraz segregację cech wewnątrz każdej kombinacji. Obserwacje te wykonano metodą opisową. Obserwacje cech morfolo-gicznych roślin w stadium kwitnienia obejmowały charakterystykę morfologiczną kwiatów: długość i szerokość płatków korony, długość czterech większych pręcików i słupka, kolor płatków korony. Obserwacje wykonano na roślinach pokolenia F1

oraz na formach rodzicielskich, mierząc po 5 losowo wybranych kwiatów z każdej rośliny.

Do analizy procesu mitozy pobrano korzonki z 3 roślin z każdego potomstwa. Korzonki pobierano bezpośrednio z doniczek i umieszczano w probówkach z lodo-watą wodą na 8 godzin i następnie utrwalono w zmodyfikowanym utrwalaczu Carnoya (6 : 3 : 1). Preparaty wykonano zmodyfikowaną metodą nigrozynową. Macerację wykonano w mieszaninie 95% alkoholu etylowego i stężonego HCl w stosunku 2 : 1, przez 10–15 minut. Następnie korzonki płukano w lodowatej wodzie destylowanej przez 30 minut i barwiono przez 1 minutę w kropli 4% nigro-zyny rozpuszczonej w alkoholu (Wojciechowski — nie publikowane).

W celu analizy procesu mejozy u roślin pokolenia F1 pobrano pąki kwiatowe

z 3 losowo wybranych roślin z każdego potomstwa, od najmniejszego do najwięk-szego i utrwalono je w zmodyfikowanym utrwalaczu Carnoya (6 : 3 : 1). Preparaty rozmazowe wykonano według metody orceinowej (Filutowicz, Kużdowicz 1951). Analizując proces mejozy zwracano uwagę na występowanie lub brak zaburzeń, ich rodzaj w poszczególnych stadiach mejotycznych oraz cechy morfologiczno-rozwojowe komórek tapetum.

Zmiany morfologiczno-rozwojowe kwiatów roślin zainfekowanych przez fito-plazmy analizowano w oparciu o zmodyfikowaną metodę parafinową (Filutowicz, Kużdowicz 1951, Wojciechowski 1985). W tym celu pobrano zniekształcone pąki kwiatowe z 10 roślin z każdego potomstwa mieszańcowego oraz jako kontrolę pąki bez zniekształceń z 3 roślin mieszańcowych tej samej kombinacji, 3 roślin linii matecznej (MS-8) i 3 roślin B. napus Lisek. Do wykonania trwałych preparatów wybrano po 5 pąków z każdej rośliny, od najmniejszego — (długość 2 mm),

po-przez pośrednie (3, 4, i 5 mm długości) do największego (pąki o pękających dział-kach kielicha). Obiekty zatopione w parafinie (62oC), po odpowiednim ułożeniu i uformowaniu bloczka cięto na mikrotomie, na skrawki grubości 9 µm w przypadku pąków małych (2 i 3 mm pąki) i 12 µm w przypadku pąków większych.

Analizując trwałe preparaty zwracano szczególną uwagę na: — proporcje długości szyjki słupka do długości zalążni,

— cechy morfologiczne znamienia słupka (znamię całkowite czy podzielone), — liczbę zalążków,

— proces mikro- i makrosporogenezy,

— cechy morfologiczno-rozwojowe komórek tapetum.

Wyniki

MS-8 B. napus × B. carinata w stadium rozety

Analizę cech morfologicznych wykonano na 461 roślinach pochodzących z 15 potomstw mieszańcowych. Wszystkie rośliny mieszańcowe z tej kombinacji krzyżowania charakteryzowały się występowaniem antocyjanowych (fioletowych) przebarwień w dolnej części łodygi i na nowo wyrastających liściach. Pod wzglę-dem tej cechy całe pokolenie mieszańców F1 podobne było do formy ojcowskiej.

Rośliny wewnątrz 9 potomstw nie różniły się od siebie, ich liście były ogonkowe, pierzastosieczne, miały kolor ciemnozielony, gruby woskowy nalot i brak owłosienia, czym upodobniły się do formy matecznej. Mieszańce w pozostałych 6 potomstwach różniły się między sobą. Część z nich miała jasnozielone liście, cieńszą okrywę woskową i lekkie owłosienie, co świadczyło o ich mieszańcowej naturze. Ważną cechą, która ujawniła się wśród roślin 9 potomstw było występowanie wyraźnych międzywęźli, tworzących łodygę nadliścieniową.

Charakterystyka cech morfologicznych roślin mieszańcowych pokolenia F1

MS-8 B. napus × B. carinata w fazie kwitnienia

Rośliny mieszańcowe pokolenia F1 w fazie kwitnienia pod względem

morfo-typu były bardziej zbliżone do formy matecznej (B. napus). Wśród roślin mieszań-cowych w tej fazie nieznacznie uwidoczniły się cechy odziedziczone po formie ojcowskiej (barwa blaszki liściowej i obecność włosków na liściach). Stąd też dokładniejsze obserwacje dotyczyły kwiatów.

Wymiary płatków korony i pręcikowia wskazują na to, że kwiaty mieszańców były wyraźnie zredukowane. Płatki korony roślin F1 były krótsze i węższe, w

pośrednia pomiędzy MS-8 a B. carinata, ale średnia długość pylnika i słupka u mieszańców była taka sama jak u ich formy matecznej (tab. 2). Kolor kwiatów był żółty, wszystkie rośliny były męskosterylne.

Tabela 1 Wymiary płatków korony roślin pokolenia F1 MS-8 B. napus × B. carinata nie porażonych

fitoplazmami i gatunków rodzicielskich — Size of corolla petals of F1 progeny MS-8

B. napus × B. carinata not infected with phytoplazmas and parental species [mm]

Płatki korony — Corolla petals

długość — length szerokość — width Obiekt

Item

średnia

mean min max

średnia

mean min max

Długość × szerokość Length × width MS-8 13,9 13,1 14,7 6,7 6,1 7,5 93,1 B. carinata 15,3 14,6 15,8 7,1 6,8 8,3 108,6 B. napus Lisek 15,1 12,9 18,2 8,2 6,7 10,1 123,8 MS-8 × B. carinata 11,8 7,0 17,0 5,4 3,0 7,0 63,7 NIR — LSD 0,05 1,6 0,76 15,04 Tabela 2 Wymiary pręcikowia i słupkowia roślin pokolenia F1 nie porażonych fitoplazmami i gatunków

rodzicielskich — Size of anthers and pistils of F1 progeny MS-8 B. napus × B. carinata

not infected with phytoplazmas and parental species [mm]

Pręcik — Stamen

nitka — filament pylnik — anther Słupek — Pistil Obiekt

Item

średnia

mean min max średnia

mean min max razem

total średnia

mean min max

Stosunek pręcik/ słupek Stamen/ pistil ratio MS-8 3,5 3,2 3,8 1,2 1,0 1,6 4,7 9,2 8,8 11,1 0,51 B. carinata 7,2 6,8 7,9 1,6 1,5 1,9 8,8 8,7 8,3 12,5 1,01 B. napus Lisek 8,4 7,6 8,9 1,7 1,4 1,8 10,1 10-,2 8,0 13,1 0,99 MS-8 × B. carinata 5,1 3,2 8,1 1,2 0,8 1,5 6,3 9,7 5,0 15,0 0,65 NIR — LSD 0,05 2,14 0,25 2,38 0,49 0,24

Obserwacje procesu mejozy u mieszańców pokolenia F1

W procesach mejotycznych roślin mieszańcowych pokolenia F1 wystąpiły

różnego rodzaju zaburzenia. Powszechnym zjawiskiem był brak synchronizacji podziałów, który zaobserwowano u roślin mieszańcowych. Profaza I mejozy gene-ralnie przebiegała prawidłowo, jedynie widoczne było wciąż dzielące się komórki tapetum. W metafazie I u znacznej części badanych obiektów z kombinacji MS-8

B. napus × B. carinata zaobserwowano od 2 do 5 chromosomów, które nie zostały

włączone w płytkę metafazalną (fot. 1). W kilku komórkach archesporialnych roślin tej kombinacji zaobserwowano multiwalenty.

W komórkach będących w anafazie I mejozy u połowy przebadanych roślin MS-8 × B. carinata występowały mosty anafazalne (od 1 do 2) (fot. 2) oraz opóźnione chromosomy. Tkanka tapetum w tej fazie procesu mejotycznego była dwujądrowa. Telofaza I przebiegała prawidłowo u większości zbadanych roślin i jedynie u 30% analizowanych roślin zauważono w niektórych komórkach od 2 do 6 opóźnionych chromosomów.

Metafaza II i anafaza II nie przebiegała prawidłowo u większości roślin mie-szańcowych i można było dostrzec chromosomy poza płytką metafazalną (fot. 3) oraz mosty i opóźnione chromosomy w anafazie (fot. 4). U połowy analizowanych roślin kombinacji MS-8 × B. carinata zaobserwowano komórki w telofazie II me-jozy, w których od 1 do 4 chromosomów było opóźnionych. Bardzo powszechnym zjawiskiem było występowanie w tetradach od 1 do 3 mikrojąder. Zaobserwowano również pentady, które tworzyły 4 mikrospory normalnej wielkości i 1 mikrojądro lub 3 mikrospory normalnej wielkości i 2 mikrojądra (fot. 5, 6), a także heksady, w skład których wchodziły 2 mikrojądra i 4 mikrospory normalnej wielkości. Po rozpadzie tetrad, pentad oraz heksad widoczne były ziarna pyłku różnej wielkości. W pylnikach z największych pąków kwiatowych widoczne były degenerujące mikrospory (tuż po rozpadzie tetrad) lub ziarna pyłku. W tych pylnikach ilość tkanki tapetum była znikoma, a komórki tapetum były zdeformowane.

Obserwacje procesu mitozy u mieszańców pokolenia F1

Proces mitozy u roślin mieszańcowych pokolenia F1 przebiegał w dużym stopniu

prawidłowo i jedynie w kilku komórkach obserwowano niewielkie zaburzenia. Podczas analizy procesu mitozy u roślin z kombinacji MS-8 B. napus × B. carinata zaobserwowano w kilku komórkach dwa chromosomy, które nie zostały włączone w płytkę metafazalną. U analizowanych mieszańców liczba chromosomów mieściła się w zakresie od 35 do 37 chromosomów.

Analiza zmian morfologiczno-rozwojowych kwiatów roślin z kombinacji MS-8 × B. carinata zaatakowanych przez fitoplazmy

Zniekształcone przez fitoplazmy kwiaty pojawiły się jedynie na wierzchoł-kach rozgałęzień wszystkich roślin z kombinacji MS-8 × B. carinata, ale tylko w jednej z trzech lokalizacji, tj. na polu doświadczalnym w Poznaniu. W pozosta-łych dwóch lokalizacjach, tj. w Dłoni i w szklarni żadna z roślin mieszańcowych, jak i kontrolnych nie została porażona przez fitoplazmy. Kwiaty zaatakowanych przez fitoplazmy roślin różniły się morfologicznie od kwiatów roślin zdrowych. Płatki korony miały postać liści, były zielone, skórzaste, pokryte grubym wosko-wym nalotem i bardzo szczelnie okrywały wnętrze kwiatu (fot. 7).

Słupki zdeformowanych kwiatów były płaskie oraz wyraźnie dłuższe i szersze w odróżnieniu od słupków zdrowych roślin. Długość szyjki słupka była średnio sześć razy mniejsza od długości zalążni. Szyjki tych słupków były krótsze od szyjek słupków roślin kontrolnych B. napus i linii MS-8 oraz mieszańców MS-8 ×

B. carinata (wolne od fitoplazm), w których zalążnia słupka była trzy razy dłuższa

od jego szyjki. Znamię słupka kwiatów roślin kontrolnych było całkowite lub lekko podzielone (fot. 8, 9). Kwiaty zaatakowane przez fitoplazmy charakteryzowały się słupkiem o znamieniu głęboko podzielonym, wyglądającym jakby to były dwa oddzielne znamiona (fot. 10). U niektórych obiektów zaobserwowano znamię słupka podzielone w dwóch miejscach, co nie zdarzało się w kwiatach roślin kontrolnych.

Słupki roślin MS-8 × B. carinata zaatakowanych przez fitoplazmy były często wygięte w literę „C”, a ich wnętrze było zdeformowane, co uniemożliwiało określenie liczby zalążków. Bardzo powszechnym zjawiskiem było występowanie w pąkach tych roślin dwóch lub trzech słupków. Jeden z nich miał prawidłowo rozwiniętą zalążnię z zalążkami, a pozostałe najprawdopodobniej wykształciły się z pręcików, w których na nitkach pylnikowych, zamiast pylników, powstały znamiona. Zaobserwowano w kilku obiektach dodatkowe słupki tworzące własne

Fot. 1–13. Podział mejotyczny oraz deformacje kwiatów u międzygatunkowych mieszańców F1 MS-8

B. napus × B. carinata — Meiotic divisions and flower deformations in F1 interspecific hybrids MS-8

B. napus × B. carinata

Fot. 1. Metafaza I – 5 chromosomów poza płytką metafazalną — Metaphase I – 5 chromosomes away from the metaphasal plate

Fot. 2. Anafaza I – mosty chromosomowe i opóźnione chromosomy — Anaphase I – chromosome bridge and lagging chromosomes

Fot. 3. Metafaza II – 7 chromosomów poza płytką metafazalną — Metaphase II – 7 chromosomes away from the metaphasal plates

Fot. 4. Późna anafaza II – opóźnione chromosomy — Late anaphase II – lagging chromosomes Fot. 5. Mikrojądro w stadium tetrady — Micronucleus in tetrad stage

Fot. 6. Dwa mikrojądra w stadium tetrady — Two micronuclei in tetrad stage

Fot. 7. Zdeformowane przez fitoplazmy kwiaty roślin mieszańcowych MS-8 B. napus × B. carinata — Flowers of MS-8 B. napus × B. carinata hybrid plants deformed by phytoplasmas Fot. 8. Przekrój przez pąk kwiatowy B. napus, roślina kontrolna — Section of B. napus flower bud,

control plant

Fot. 9. Znamię słupka u rośliny kontrolnej B. napus — Pistil stigma of B. napus in control plant Fot. 10. Podzielone znamię słupka u rośliny mieszańcowej MS-8 B. napus × B. carinata porażonej

przez fitoplazmy — Divided stigma in MS-8 B. napus × B. carinata hybrid plant infected with phytoplasmas

Fot. 11. Trzy słupki w jednym pąku kwiatowym, na jednym ze słupków 2 znamiona, roślina mieszań-cowa MS-8 B. napus × B. carinata zainfekowana fitoplazmami — Three pistils in one flower bud, one pistil with two stigmas, MS-8 B. napus × B. carinata hybrid plant infected with phytoplasmas Fot. 12. Tkanka archesporialna w fazie mejozy i tapetum u B. napus, roślina kontrolna — Archespor

tissue in meiosis and tapetum of B. napus, control plant

Fot. 13. Komórki archesporialne w różnych fazach podziału mejotycznego, widoczne słabo wykształcone tapetum u mieszańca MS-8 B. napus × B. carinata — Archespor cells in different meiotic stages, visible weakly developed tapetum in MS-8 B. napus × B. carinata hybrid plant

zalążki (do 4 zalążków). Inną deformacją było powstanie na jednym słupku dwóch odrębnych znamion, z których jedno położone było prawidłowo, a drugie umiesz-czone było w połowie długości słupka (fot. 11). W zalążni roślin kombinacji MS

B. napus × B. carinata porażonych przez fitoplazmy było średnio 19 zalążków,

czym nie różniły się od roślin zdrowych tej samej kombinacji. U kontrolnych roślin

B. napus znajdowały się średnio 22 zalążki w zalążni.

W pylnikach kontrolnych roślin B. napus tkanka tapetalna była dwujądrowa, dobrze wykształcona i równomiernie otaczała całe wnętrze pylnika. Po prawidłowym podziale mejotycznym komórek archesporialnych tworzyły się mikrospory, które dojrzewały w ziarna pyłku (fot. 12). U roślin z kombinacji MS-8 × B. carinata, bez względu na to, czy były porażone przez fitoplazmy czy nie, wyraźne i prawidłowo wykształcone tapetum występowało jedynie w najmniejszych pąkach kwiatowych. Im starsze pąki, tym mniej było tkanki tapetum w pylnikach, stawała się ona coraz mniej wyraźna i przezroczysta (fot. 13). W pylnikach największych pąków obser-wowano całkowity brak tkanki tapetum i jednocześnie degenerujące ziarna pyłku. W pylnikach roślin MS-8 × B. carinata zaatakowanych przez fitoplazmy komórki archesporialne później wchodziły w fazę podziałów mejotycznych, w porównaniu z pylnikami roślin niezainfekowanych. U roślin zdrowych podziały redukcyjne tkanki archesporialnej miały miejsce już w najmniejszych pąkach (2 mm długości), podczas gdy u porażonych roślin miało to miejsce dopiero w pąkach długości 3 mm.

W czasie, gdy w pylnikach kontrolnych roślin B. napus obserwowano niedoj-rzałe mikrospory (tuż po rozpadzie tetrad), spośród komórek ośrodka w zalążkach wyodrębniła się jedna komórka archesporialna (fot. 14). Komórka ta zaczynała się dzielić w momencie, gdy ziarna pyłku w pylnikach uzyskały już dojrzałość (fot. 15). Z kolei przy tej samej wielkości pąków z roślin mieszańcowych MS-8 × B. carinata nie porażonych przez fitoplazmy w komorach pylnikowych obserwowano już de-generujące ziarna pyłku, a w zalążkach wyodrębniała się komórka archesporialna. Podział tej komórki przebiegał prawidłowo, jednak czasem odbiegał od normal-nego procesu. Komórka archesporialna najpierw dzieliła się mitotycznie tworząc dwie komórki: wewnętrzną i przykrywkową, otoczone warstwą komórek epider-malnych (fot. 16). Następnie komórka wewnętrzna prawdopodobnie dzieliła się mejotycznie, aby w końcowym etapie uformować tetradę (fot. 17) i po jej roz-padzie z jednej z mikrospor wytworzyć woreczek zalążkowy (fot. 18). Tego typu rozwoju makrospory nie zaobserwowano u mieszańcowych roślin porażonych przez fitoplazmy. U tych roślin stosunkowo rzadko powstawały komórki archesporialne w zalążkach i bardzo często komórki ośrodka pozostawały niezróżnicowane. W cza-sie, gdy wyodrębniały się komórki archesporialne w zalążkach, mikrospory dege-nerowały będąc jeszcze w tetradach.

Fot. 14–18. Makrosporogeneza u roślin kontrolnych B. napus i mieszańców MS-8 B. napus × B. carinata nie porażonych przez fitoplazmy i porażonych fitoplazmami — Macrosporogenesis in B. napus control plants and in MS-8 B. napus × B. carinata hybrid plants frez and infected with phytoplasmas Fot. 14. Komórka archesporialna w zalążku u B. napus — Archespor cell in the ovule of B. napus Fot. 15. Tetrada w zalążku u B. napus — Tetrad in B. napus ovule

Fot. 16. Komórka wewnętrzna i komórka przykrywkowa w zalążku mieszańców MS-8 B. napus × B. carinata — Inner and parental cell in the ovule of MS-8 B. napus × B. carinata

Fot. 17. Tetrada w zalążku mieszańca MS B. napus × B. carinata wolnego od fitoplazm — Tetrad in the ovule of MS-8 B. napus × B. carinata hybrid plant not infected with phytoplasmas Fot. 18. Jednojądrowy woreczek zalążkowy w zalążku mieszańców MS-8 B. napus × B. carinata

wolnych od fitoplazm — One nuclear embryo sack in the ovule of MS-8 B. napus × B. carinata hybrid plant not infected with phytoplasmas

Dyskusja

Wszystkie rośliny mieszańcowe analizowanych potomstw wykazywały męską sterylność. Płatki kwiatów tych roślin były węższe i krótsze w porównaniu z męsko-płodnymi roślinami ojcowskimi. Słupki sterylnych kwiatów były tej samej wiel-kości, co w kwiatach płodnych gatunków użytych do krzyżowania, natomiast pręci-kowie było silnie zredukowane. Zredukowane pręciki miały krótką nitkę pręcikową i osiągały zaledwie połowę długości słupka. Porównywalny stosunek długości pręci-kowia do długości słuppręci-kowia zaobserwowała Bartpręci-kowiak-Broda (1991) w

bada-niach nad męską niepłodnością u rzepaku. Pylniki sterylnych roślin były słabo wykształcone, stożkowate i u wszystkich analizowanych roślin nie wytwarzały pyłku. W literaturze dostępnej na ten temat przeważają doniesienia, w których autorzy opisują powszechnie występujące u roślin męskosterylnych węższe płatki korony i zredukowane pręcikowie w porównaniu z normalnymi (Ogura 1968, Shiga 1976, Mackiewicz i in. 1978, Wojciechowski 1993).

Obserwacje cytologiczne pylników różnych roślin MS wskazują, że zabu-rzenia ujawniają się przede wszystkim w tapetum. Symptomami nienormalnego rozwoju tapetum są zaburzenia czasu naturalnej degeneracji polegające bądź to na opóźnionym, bądź też na przedwczesnym jego obumieraniu (Laser i Lersten 1972, Bartkowiak-Broda 1991). Obserwacje procesu mikrosporogenezy u roślin mieszań-cowych wskazują na to, że jedną z przyczyn ich męskiej niepłodności była dege-neracja tapetum przed dojrzeniem mikrospor. W pylnikach najmniejszych pąków kwiatowych widoczne były wyraźnie wykształcone dwujądrowe komórki tapetum. W pylnikach izolowanych z największych pąków komórki tkanki odżywczej mikrospor występowały tylko sporadycznie i wykazywały różny stopień degene-racji, podobnie jak występujące tam mikrospory. Te obserwacje znalazły swoje odbicie także w analizowanych preparatach trwałych. Na przekrojach przez pąki kwiatowe obserwowano postępującą redukcję warstwy tapetum, która rozpoczy-nała się od momentu wytworzenia tetrad. Według Bartkowiak-Broda (1991) męska niepłodność typu CMS ogura jest wynikiem degeneracji tapetum i mikrospor. Degeneracja ta zachodzi po stadium tetrad niezależnie od warunków środowisko-wych, w których rozwijają się rośliny męskoniepłodne.

W prezentowanej pracy u mieszańców zaobserwowano nieprawidłowości w przebiegu mejozy, począwszy od metafazy I aż do wytworzenia się spor. Często występującym zaburzeniem, które potwierdzało mieszańcowy charakter roślin wszystkich kombinacji krzyżowania był brak synchronizacji faz podziałowych. Podobne nieprawidłowości zauważył Springer (2004) w badaniach nad mieszań-cami z rodzaju Brassica. W jednym pylniku można było dostrzec komórki będące w początkowym etapie mejozy oraz takie, w których podziały redukcyjne dobie-gały końca. Należy zauważyć, że w komórkach analizowanych roślin mieszańco-wych oprócz genomów A i C występuje także genom B z B. carinata. To może tłumaczyć większe nasilenie anomalii w rozdziale chromosomów tych roślin w odróżnieniu od roślin mieszańcowych otrzymanych uprzednio z dwóch innych kombinacji krzyżowania (Wojciechowski, Lewandowska 2006), które posiadają tylko genomy A i C. Choudhary i Joshi (1999) zauważyli podobne nasilenie anormalnych podziałów mejotycznych u mieszańców, które oprócz genomów A i C posiadały także genom B. Według wyżej wymienionych autorów i Olsson’a (1960) takie nieprawidłowości u mieszańców ABC wskazują na większe pokre-wieństwo genomu A do C niż do B.

Zaburzeniem najczęściej pojawiającym się w trakcie mejozy u analizowanych mieszańców były opóźnione chromosomy w metafazie I i II, anafazie I i II oraz telofazie I i II. Według Nwankiti (1970) opóźnione chromosomy mogą tworzyć mikrojądra lub aktywne bieguny. Prowadzi to do powstania komórek macierzys-tych pyłku z różną liczbą spor. W prezentowanej pracy komórki macierzyste pyłku przybierały formę tetrad, pentad, a nawet heksad. W takich układach mikrospor znajdowało się od 1 do 3 mikrojąder.

W metafazie I mejozy u roślin mieszańcowych zaobserwowano zjawisko łączenia się różnej liczby chromosomów w jeden multiwalent. Jednak ze względu na niską jakość obrazu mikroskopowego trudno było jednoznacznie określić ile chromosomów wchodziło w skład danego multiwalentu. Nwankiti (1970) sądzi, że poliwalentne układy chromosomów są najbardziej odpowiedzialne za trudności w rozchodzeniu się chromosomów w anafazie I i II, w wyniku czego mogą powstać aneuploidalne gamety. Według Choudhary i Joshi (1999) pojawienie się multi-walentów jest atrybutem koniugacji chromosomów z genomów A, B i C rodzaju

Brassica i świadczy o częściowej homologii pomiędzy tymi genomami. Podobne

układy chromosomów w badaniach nad mieszańcami oddalonymi w obrębie rodzaju Brassica obserwowali także Wojciechowski (1985), Kirti i in. (1995) oraz Springer (2004).

Na wierzchołkach rozgałęzień części roślin mieszańcowych F1 pojawiły się

zdeformowane kwiaty. Według danych literaturowych owe zniekształcenia są wyni-kiem bytujących we floemie mikroorganizmów zwanych fitoplazmami (Kamińska 2004, Bertacini i in. 1998, Starzycki i Starzycka 2000). Fitoplazmy są przyczyną bardzo destrukcyjnych chorób u ponad 600 gatunków roślin (Kamińska 2004). U rzepaku ozimego porażenie przez fitoplazmy objawia się karłowatością i miot-lastym pokrojem roślin, poczerwienieniem, zżółknięciem lub chlorozą liści, zielo-nymi płatkami korony oraz rozległymi zniekształceniami słupków roślin (Bertacini i in. 1998). U roślin mieszańcowych w analizowanym doświadczeniu zmiany morfologiczne obejmowały tylko kwiaty. Płatki korony były zielone, skórzaste, podobne do liści, bardzo szczelnie obejmowały cały kwiat. Lehmann i Skadow (1971) określili zielone płatki pojawiające się u rzepaku jako ewolucyjną regresję części kwiatowych do liści. Zdeformowane słupki były płaskie, wyraźnie dłuższe i szersze w odróżnieniu od słupków zdrowych roślin i przyjmowały różne kształty. Zdeformowane kwiaty nie wiązały łuszczyn. W zalążkach z tych kwiatów spośród komórek ośrodka wyodrębniała się komórka macierzysta makrospory, która nie wchodziła w dalsze podziały. Jest to dość osobliwy przypadek, który dotychczas nie został w literaturze opisany. Zdeformowane kwiaty wykazywały męską steryl-ność, podobnie jak u wszystkich badanych roślin mieszańcowych. Jedyną różnicą był fakt, że komórki archesporialne mikrospor później wchodziły w podziały mejotyczne niż miało to miejsce u mieszańców nie porażonych przez fitoplazmy.

Wydaje się, że najbardziej istotny jest fakt, iż rośliny zainfekowane pojawiły się w obrębie tylko jednej kombinacji krzyżowania MS-8 B. napus × B. carinata. Sugeruje to genetyczne predyspozycje tej grupy roślin do porażenia przez fito-plazmy, jednak ten pogląd nie ma potwierdzenia w literaturze. Sposób zainfeko-wania roślin kombinacji MS-8 B. napus × B. carinata przez wyżej wymienione mikroorganizmy nie jest znany. W swych badaniach Starzycki i Starzycka (2000) wykazali, że fitoplazmy mogą przenosić się wraz z materiałem siewnym. Nie znajduje to jednak potwierdzenia w prezentowanej pracy. Nasiona mieszańców MS-8 B. napus × B. carinata zostały wysiane w trzech miejscach: na poletku doświadczalnym AR w Poznaniu, na polu stacji doświadczalnej AR w Dłoni oraz w szklarni AR w Poznaniu. Tylko rośliny rosnące na poletku doświadczalnym AR w Poznaniu uległy porażeniu przez fitoplazmy. Może to oznaczać, że właśnie w tym miejscu były najmniej dogodne warunki dla rozwoju roślin tej kombinacji krzyżowania. Stres wodny i temperaturowy oraz żerowanie mszyc spowodowały ujawnienie się defektów wywołanych fitoplazmami tylko u mieszańców mających genetycznie uwarunkowaną niską odporność na stresy biotyczne. W tym przy-padku były to rośliny mieszańcowe MS-8 B. napus × B. carinata, które w środo-wisku, w którym brak było stresów biotycznych i abiotycznych (szok termiczny, brak wody, mszyce) nie wykazywały objawów porażenia przez fitoplazmy.

Podsumowanie

1. Mieszańcowy charakter roślin pokolenia F1 ujawnił się w stadium rozety.

Wśród badanych mieszańców MS-8 B. napus × B. carinata wystąpiły rośliny wyglądem zbliżone do formy matecznej lub do formy ojcowskiej, a częściej pośrednie pomiędzy gatunkami rodzicielskimi. Kwiaty wszystkich roślin poko-lenia F1 były męskosterylne i charakteryzowały się silną redukcją płatków

korony oraz pręcikowia. Zdegenerowane pylniki nie wytwarzały ziaren pyłku. 2. Zaburzenia w procesie mejozy oraz w funkcjonowaniu tapetum były główną

przyczyną degeneracji mikrospor i powstawania martwych ziaren pyłku. 3. Zainfekowane przez fitoplazmy rośliny pojawiły się tylko w obrębie

kombi-nacji MS-8 B. napus × B. carinata, co świadczy o występujących różnicach genotypowych odnośnie wrażliwości na porażenie przez fitoplazmy w okreś-lonych warunkach środowiskowych.

Literatura

var. oleifera. Hodowla Roślin Aklimatyzacja i Nasiennictwo, 35 (3-4): 3-60.

Bertacini A., Vovackova Z., Vibio M., Franova J., Novvatil M., Spak J., Nelesavova J. 1998. Comparison of phytoplasmas infecting winter oilseed rape in the Czech Republic with Italian Brassica phytoplasmas and their relationships to the aster yellow group. Plant Pathology, 47: 317-324.

Chen B.Y., Heneen W.K., Jönsson R. 1988. Resynthesis of Brassica napus L. through Interspecific Hybridisation between B. alboglabra Bailey and B. campestris L. with Special Emphasis on Seed Colour. Plant Breeding, 101: 52-59.

Choudhary B.R., Joshi P. 1999. Interspecific Hybridization in Brassica. www.regional.org.au: 516. Filutowicz A., Kużdowicz A. 1951. Mikrotechnika roślinna. PWRiL, Warszawa.

Kamińska M. 2004. Wiadomości ogólne. Choroby roślin ogrodniczych powodowane przez fitoplaz-my. Hortpress, Warszawa: 8-28.

Kirti P.B., Banga S.S., Prakash S., Chopra V.L. 1995. Transfer of Ogu cytoplasmic male sterility to Brassica juncea and improvement of the male sterile line through somatic cell fusion. Theor. Appl. Genet., 91: 517-521.

Laser K.D., Lersten N.R. 1972. Anatomy and cytology of mikrosporogenesis in cytoplasmic male sterile angiosperms. Bot. Rev., 3: 425-454.

Lehmann W., Skadow K. 1971. Untersuchungen zur Verbreitung, Atiologie und Vektorübertrag barkeit der Blütenvergrünung des Rapes. Archiv für Phytopathologie und Pflanzenschutz., 7: 323-336 – cytat za Bertacini i in. (1998).

Mackiewicz T., Wojciechowski A., Krzymański J. 1978. Ustalenie charakteru męskiej sterylności u szeregu rodów rzepaku ozimego. Zeszyty Problemowe IHAR, Wyniki Badań nad Rzepakiem Ozimym lata 1977-1978: 97-103.

Nwankiti O. 1970. Cytogenetics and breeding studies with Brassica. I. Cytogenetics experiments with Brassica napocampestris. Hereditas., 66: 109-126.

Ochodzki P., Piotrowska A. 2002. Właściwości fizyczne i skład chemiczny nasion rzepaku ozimego o różnym kolorze okrywy nasiennej. Rośliny Oleiste – Oilseed Crops, XXIII: 235-242.

Ogura H. 1968. Studies on the new male sterility in Japanese radish with special references to the utilization of this sterility towards the practical rising of hybrid seeds. Mem. Fac. Agric. Ragostrima Univ., 62: 39-78.

Olsson G. 1960. Species crosses within the genus Brassica. II. Artificial Brassica napus L. Hereditas, 46: 351-386.

Rahman M.H., Joersbo M., Poulsen M.H. 2001. Development of yellow-seeded Brassica napus of double low quality. Plant Breeding, 120 (6): 473-478.

Shiga T. 1976. Cytoplasmic Male Sterility and its Utilization for Heterosis Breeding in Rapeseed, Brassica napus L. JARQ 10 (4): 178-182.

Springer B. 2004. Bariery krzyżowalności w rodzaju Brassica. Praca doktorska, AR Poznań.

Starzycki M., Starzycka E. 2000. Deformacje rodziców i potomstwa roślin rzepaku (B. napus) zakażonych przez Phytoplasma sp. Rośliny Oleiste – Oilseed Crops, XXI (2): 399-408.

Wojciechowski A. 1985. Interspecific hybrids between Brassica campestris and B. oleracea. II. Morphological traits. Somatic chromosome number. Meiotic division and microsporogenesis. Genetica Polonica, 26 (4): 437-446.

Wojciechowski A. 1993. Some morfological and phenological traits and fertility of lines of artificial winter oilseed rape originated from male-sterile plants (Brassica napus var. oleifera L.). Genetica Polonica, 34 (4): 317-325.

Wojciechowski A., Lewandowska L. 2006. Ocena efektywności krzyżowań oddalonych linii MS B. napus z gatunkami Brassica o żółtej i brązowej barwie okrywy nasiennej z zastosowaniem kultur zarodkowych. Rośliny Oleiste – Oilseed Crops, XXVII (1): 17-30.