• Nie Znaleziono Wyników

Zestaw do izolacji DNA z krwi świeżej, mrożonej, osocza, surowicy, kożuszków leukocytarnych, limfocytów oraz płynów ustrojowych

N/A
N/A
Protected

Academic year: 2022

Share "Zestaw do izolacji DNA z krwi świeżej, mrożonej, osocza, surowicy, kożuszków leukocytarnych, limfocytów oraz płynów ustrojowych"

Copied!
12
0
0

Pełen tekst

(1)

Zestaw do izolacji DNA z krwi świeżej, mrożonej, osocza, surowicy, kożuszków leukocytarnych, limfocytów oraz

płynów ustrojowych

(2)
(3)

I. PRZEZNACZENIE ZESTAWU

Zestaw EXTRACTME DNA BLOOD KIT przeznaczony jest do szybkiej i wydajnej

­izolacji­genomowego­DNA­o­wysokiej­czystości­z­krwi­świeżej­lub­mrożonej­

(ludzkiej­lub­ssaczej),­osocza,­surowicy,­kożuszków­leukocytarnych,­limfocytów­oraz­

płynów­ustrojowych.­Protokół­izolacji­i­składy­buforów­zostały­zoptymalizowane­

w­celu­osiągnięcia­zarówno­wysokiej­wydajności,­jak­i­czystości­izolowanego­DNA.

Produkt­przeznaczony­jest­wyłącznie­do­użytku­w­celach­badawczych.

II. SKŁAD I PRZECHOWYWANIE ZESTAWU

LICZBA IZOLACJI

10 IZOLACJI

50 IZOLACJI

250 IZOLACJI

1 Warunki prze­chowywania

Nr katalogowy EM05-010 EM05-050 EM05-250 RBC Lysis Buffer

(Red­Blood­Cell­Lysis­Buffer) 10 ml 50 ml 250 ml TP

BL Buffer (Lysis­Buffer) 3.8 ml 19 ml 94 ml TP

Proteinase K *

(lyophilized)­­ 1 szt. 1 szt. 5 szt. -20°C 2

Proteinase Buffer 200 μl 320 μl 1.6 ml TP

BB Buffer (conc.) **

(Binding­Buffer) 1.8 ml 10 ml 44 ml TP

BW1 Buffer (conc.) **

(Wash­Buffer) 3.3 ml 17 ml 82 ml TP

BW2 Buffer (conc.) **

(Wash­Buffer) 1.4 ml 9 ml 33 ml TP

Elution Buffer 2 ml 10 ml 5 x 10 ml TP

DNA Purification Columns 10 pcs 50 pcs 5 x 50 pcs TP Collection Tubes (2 ml) 10 pcs 50 pcs 5 x 50 pcs TP

Przed­pierwszym­użyciem­do­probówki­zawierającej­liofilizat­Proteinase K­należy­dodać­320­μl­

Proteinase­Buffer­(w­zestawie­na­10­izolacji­należy­dodać­200­μl­buforu)

Przed­pierwszym­użyciem­do­BB, BW1 i BW2 Buffer­należy­dodać­odpowiednią­ilość 96–100%

etanolu­(informacja­na­etykietach­oraz­w­poniższej­tabeli).­Po­dodaniu­etanolu­zalecane­jest­

oznaczenie butelki.

*

** *

1­­­TP­–­temperatura­

pokojowa (+15°C do +25°C)

2­­­Roztwór­Proteinase K należy­przechowywać­

w temperaturze -20°C.

(4)

LICZBA IZOLACJI 10 IZOLACJI 50 IZOLACJI 250 IZOLACJI

Nr katalogowy EM05-010 EM05-050 EM05-250

BB Buffer 1.8 ml 10 ml 44 ml

Etanol 96–100% 2.7 ml 15 ml 66 ml

Całkowita­objętość 4.5 ml 25 ml 110 ml

BW1 Buffer 3.3 ml 17 ml 85 ml

Etanol 96–100% 3.3 ml 17 ml 82 ml

Całkowita­objętość 6.6 ml 34 ml 164 ml

BW2 Buffer 1.4 ml 9 ml 33 ml

Etanol 96–100% 3.3 ml 21 ml 77 ml

Całkowita­objętość 4.7 ml 30 ml 110 ml

Wszystkie­ bufory­ w­ zestawie­ należy­ przechowywać­ szczelnie­ zamknięte,­

aby uniknąć­zmiany­stężeń­w­wyniku­parowania.

Data ważności

Data­ważności­zestawu­podana­jest­na­etykiecie­produktu.­Po­otwarciu­zestaw­

zachowuje­stabilność­przez­okres­12­miesięcy.

(5)

III. SPECYFIKACJA PRODUKTU

MATERIAŁ WYJŚCIOWY

krew­świeża­lub­mrożona­(do­1­ml)­,­osocze,­surowica,­kożuszki­leukocytarne,­

limfocyty,­płyny­ustrojowe­(do­200­μl)­­­

WYDAJNOŚĆ IZOLACJI

3–10­μg­DNA­z­200­μl­ludzkiej­krwi POJEMNOŚĆ ZŁOŻA

ok. 27 μg DNA

CZAS IZOLACJI

ok.­25­minut­(włączając­czas­inkubacji) CZYSTOŚĆ DNA

A260/A280­=­1,7–1,9

(6)

IV. PRZYGOTOWANIE PRÓBKI

W­przypadku­krwi­świeżej,­przed­przystąpieniem­do­izolacji­próbkę­należy­

zmieszać­z­odpowiednią­ilością­antykoagulantu­(EDTA,­cytrynian).­Jeśli­do­próbki­

był­już­uprzednio­dodany­antykoagulant,­ten­etap­należy­pominąć.­

Próbkę­ krwi­ można­ przechowywać­ w­ obecności­ antykoagulantów­ (EDTA,­

cytrynian) w­temp.­+4°C­(do­24­h)­lub­w­postaci­zamrożonej­(preferowana­temp.­

-80°C).­Należy­unikać­częstego­rozmrażania­i­zamrażania­próbek­przed­izolacją­DNA.­

Przed­ pobraniem­ odpowiedniej­ objętości­ krwi­ do­ izolacji­ należy­ dokładnie­

wymieszać­ krew­ przez­ odwracanie­ probówki,­ z­ której­ materiał­ ma­ zostać­

pobrany.­W­przypadku­krwi­mrożonej­należy­odczekać­kilka­minut­do­całkowitego­

rozmrożenia­próbki.

W­niektórych­przypadkach­możliwe­jest­powstanie trwałego skrzepu­czerwonych­

komórek­krwi.­Skrzep­należy­dokładnie­rozbić­poprzez­intensywne­worteksowanie­

lub/i­pipetowanie­krwi­zmieszanej­z­buforem­RBC­Lysis­Buffer.­Następnie­należy­

prowadzić­izolację­zgodnie­z­protokołem,­a­przed­naniesieniem­lizatu­na­złoże­

minikolumny­(pkt.­11­Protokołu­izolacji)­dodać­dodatkowy­etap­wirowania­60 s­

przy­11­000–21­000­x­g,­a­na­złoże­nanieść­supernatant­znad­powstałego­osadu.

Podczas­izolacji­z­kożuszków­leukocytarnych­lub­limfocytów­nie­należy­stosować­

więcej­niż­5x 106­komórek.

Gdy objętość próbki krwi jest mniejsza niż 200 μl,­należy­dodać­Elution­Buffer­lub­

roztworu­PBS­(brak­w­zestawie)­do­całkowitej­objętości­200­μl,­a­następnie­przejść­

do­ kroku­1­Protokołu­izolacji­(dla­próbek­krwi­lub­kożuszków­leukocytarnych)­lub­

kroku­5­(dla­osocza,­surowicy,­limfocytów­i­płynów­ustrojowych).

(7)

V. PRZED PRZYSTĄPIENIEM DO IZOLACJI

1. Każdy­z­odczynników­zestawu­należy­wymieszać.

2. Należy­pamiętać­o­rozpuszczeniu­liofilizatu­Proteinase K w odpowiedniej ilości­buforu­do­proteinazy.­

3. W­przypadku­wytrącenia­osadu­w­buforach,­butelkę­z­roztworem­należy­

ogrzać­do­temp.­37°C (BB, BW1, BW2 Buffer) lub 50–60°C­(pozostałe­bufory)­

i­inkubować,­aż­do­całkowitego­rozpuszczenia­osadu,­mieszając­co­kilka­

minut,­a­następnie­schłodzić­do­temp.­pokojowej.­

4. Nagrzać­termoblok­lub­łaźnię­wodną­do­temp.­55°C.

5. Należy­ pamiętać,­ aby­ wszystkie­ etapy­ izolacji­ przeprowadzać­ w­ temp.­

pokojowej,­jeśli­nie­zalecono­inaczej.

(8)

VI. PROTOKÓŁ IZOLACJI

Izolując­DNA­z­krwi­z­lub­kożuszków­leukocytarnych­należy­rozpocząć­

procedurę­izolacji­od­kroku­1.­Przy­izolowaniu­z­osocza,­surowicy,­

limfoców­ lub­ płynów­ ustrojowych­ należy­ rozpocząć­ procedurę­

izolacji od kroku 5.

1. Pobrać­ 200–1000 μl krwi­ i­ przenieść­ do­ probówki­ typu­

Eppendorf­(1.5–2­ml),­a­następnie­dodać­1 objętość buforu do lizy­erytrocytów­RBC Lysis Buffer­(np.­pobierając­200­μl­krwi­do­

izolacji­należy­dodać­200­μl­buforu­RBC­Lysis­Buffer).

c

Gdy­objętość­próbki­jest­mniejsza­niż­200­μl,­uzupełnić­roztworem­PBS­

lub­Elution­Buffer­do­200­μl,­a­następnie­dodać­200­μl­RBC­Lysis­Buffer.

2. Dokładnie­wymieszać­przez­odwracanie­probówki,­aż­powstanie­

klarowny­czerwony­roztwór.

3. Wirować­4­min­przy­8600­x­g.

c

Nie­ zaleca­ się­ zwiększania­ prędkości­ wirowania,­ gdyż­ może­ to­

utrudnić­późniejsze­zawieszanie­powstałego­osadu­białych­krwinek­

w­buforze­lizującym.

4. Ostrożnie­usunąć­pipetą­supernatant­znad­osadu­białych­krwinek.

5. Dodać­375 μl BL Buffer.

c

W­przypadku­izolacji­z­krwi­lub­kożuszków­leukocytarnych­należy­

dokładnie­zawiesić­osad­komórek­poprzez­pipetowanie.

c

W­przypadku­izolacji­z­surowicy­osocza,­limfocytów­lub­płynów­ustrojowych­

zawiesić­osad­komórek­poprzez­kilkukrotne­odwrócenie­probówki.

6. Dodać­6 μl Proteinase K­i­wymieszać­przez­worteksowanie.

(9)

9. Próbkę­intensywnie­worteksować­przez­15–20­s.

10. Całość­lizatu­przenieść­do­minikolumny­ze­złożem,­umieszczonej­

w­probówce­odbierającej­i­wirować­60­s­przy­11­000–15­000­x­g.

11. Przenieść­minikolumnę­do­nowej­probówki­odbierającej­(2­ml).

12. Dodać­do­minikolumny­600 μl buforu­płuczącego­BW1 Buffer i­wirować­30­s­przy­11­000–15­000­x­g.

13. Wylać­ przesącz­ z­ probówki­ odbierającej­ i­ umieścić­ w­ niej­

z­powrotem­minikolumnę.

14. Dodać­do­minikolumny­400 μl BW2 Buffer­i­wirować­30­s­przy­

11­000–15­000­x­g.

15. Wyjąć­ minikolumnę,­ wylać­ przesącz­ i­ umieścić­ ponownie­

minikolumnę­w­probówce­odbierającej.

16. Wirować­60–120­s­przy­15­000–21­000­x­g.

c

Bufor­ płuczący­ zawiera­ alkohol,­ który­ może­ powodować­ inhibicję­

niektórych­reakcji­enzymatycznych,­a­także­obniżenie­wydajności­elucji,­

dlatego­istotne­jest­jego­całkowite­usunięcie­przed­etapem­elucji.

17. Ostrożnie­wyjąć­suchą­minikolumnę­z­probówki­odbierającej­

i­umieścić­ją­w­jałowej­probówce­1.5­ml­typu­Eppendorf.

18. Nanieść­ 50-100 μl Elution Buffer­ centralnie­ na­ złoże w minikolumnie.

c

Możliwa­jest­zmiana­objętości­buforu­elucyjnego­w­zakresie­20–200 μl.

19. Inkubować­minikolumnę­z­buforem­przez­120­s­w­temperaturze­­

pokojowej.

20. Wirować­60­s­przy­11­000–15­000­x­g.

21. Minikolumnę­usunąć,­a­wyizolowane­DNA­przechowywać­w­temp.­

+4°C lub -20°C­w­zależności­od­dalszych­analiz.

(10)

VII. BEZPIECZEŃSTWO I POSTĘPOWANIE Z PRODUKTEM

RBC Lysis Buffer

Uwaga H319, H412

P264,­P273,­P305+P351+P338 Proteinase K (lyophilized)

Niebezpieczeństwo H315, H319, H334, H335

P261,­P271,­P304+P340,­P342+P311 BL Buffer

Uwaga H319

P264,­P305+P351+P338

BB Buffer

Niebezpieczeństwo

H318, H302, H332, H315, H412

P280,­P261,­P305+P351+P338,­P301+P312 P330,­

P304+340­P312 BW1 Buffer

Niebezpieczeństwo H318, H315, H412

P280,­P305+P351+P338­P310

(11)

H302 Działa­szkodliwie­po­połknięciu.­H315­Działa­drażniąco­na­skórę. H318­Powoduje­

poważne­ uszkodzenie­ oczu.­H319­ Działa­ drażniąco­ na­ oczy.­H332­ Działa­ szkodliwie­

w­następstwie­wdychania.­H334­Może­powodować­objawy­alergii­lub­astmy­lub­trudności­

w­ oddychaniu­ w­ następstwie­ wdychania.­H335­ Może­ powodować­ podrażnienie­ dróg­

oddechowych.­H412 Działa­szkodliwie­na­organizmy­wodne,­powodując­długotrwałe­skutki.­

P261  Unikać  wdychania­ pyłu/dymu/gazu/mgły/par/rozpylonej­ cieczy.­P264­ Dokładnie­

umyć­ręce­po­użyciu.­P271­Stosować wyłącznie­na­zewnątrz­lub­w­dobrze­wentylowanym­

pomieszczeniu. P273­Nie wypuszczać­do­środowiska.­P280­Stosować­rękawice­ochronne/

odzież­ochronną/ochronę­oczu/ochronę­twarzy.­P305+P351+P338­W­PRZYPADKU­DOSTANIA­

SIĘ­DO OCZU:­Ostrożnie­płukać­wodą­przez­kilka­minut.­Wyjąć­soczewki­kontaktowe,­jeżeli­

są­i­można­je­łatwo­usunąć.­Nadal płukać.­P342+P311 W przypadku­wystąpienia­objawów­

ze­strony­układu­oddechowego:­Skontaktować­się­z­OŚRODKIEM­ZATRUĆ­lub­z­lekarzem.­

P304+P340 W przypadku­dostania­się­do­dróg­oddechowych:­Wyprowadzić­lub­wynieść­

poszkodowanego­ na­ świeże­ powietrze­ i­ zapewnić­ warunki­ do­ odpoczynku­ w­ pozycji­

umożliwiającej­swobodne­oddychanie.­P312 W przypadku­złego­samopoczucia­skontaktować­

się­z­ośrodkiem­zatruć­lub­lekarzem.­P301+P312 P330 W przypadku­połknięcia:­W­przypadku­

złego­samopoczucia­skontaktować­się­z­ośrodkiem­zatruć­lub­lekarzem.­Wypłukać­usta.­

P310 Natychmiast­skontaktować­się­z­ośrodkiem­zatruć­lub­lekarzem.

(12)

Cytaty

Powiązane dokumenty

Dostrzegam, że w doświadczeniu pacjentów niedecydujących się na kontynuowanie terapii online jest powtarzająca się trauma zerwanych więzi.. W prze- szłości porzuceni,

Gracze (players) wewnętrznie odrzucają cele instytucjonalne, ale wiedząc, że system jest nie do pokonania, zewnętrznie się do nich stosują (Behan 2013, s. 100),

Ocena fenotypu limfocytów T, między innymi pod kątem obecności wybranych markerów aktywacji, oraz analiza stężeń wybranych cytokin w surowicy pacjentów z CHAD,

The concentration of a 1 -AP in the blood plasma of patients with aortic aneurysm was higher than in the blood plasma of healthy subjects with lower levels of AT-III and cystatin

Serum antiphospholipid antibodies in patients with acquired heart valve diseases Background: Antiphospholipid antibodies (APA) could play a role in mediating cardiac valvular damage

Pomysłodawcą warsztatów oraz ich głównym organizatorem był profesor Tadeusz Dobosz, kierownik Zakładu Technik Molekularnych.. W  warsztatach wzięło udział 33 uczestników

W pracy zaprezentowano najnowsze doniesienia dotyczące nieinwazyjnych badań antygenów krwi płodu z osocza kobiet ciężarnych — aktualny stan wiedzy i doświadczeń klinicznych z

W opisywanym projekcie otrzymano istotnie statystycznie niższe średnie stężenia kwasu α-aminomasłowego oraz ornityny w grupie chłopców z autyzmem względem grupy kontrolnej..