BOGUMIŁA MUSZKATOWA
ROCZNIKI PZH 1960, t. XI, nr 2
WYNIKI
WSTĘPNYCHPRÓB METODYCZNYCH Z ZAKRESU CHROMATOGRAFII
BIBUŁOWEJDO
BADAŃNAD
SKŁADEMAMINOKWASOWYM
BIAŁEK (D o n i es i en i e ty m cz a s o w e)Z Zakładu Higieny Żywienia PZH
Celem pracy jest zbadanie
możliwościzastosowania metody chroma- tografii
bibułowejdo szyibkiego oznaczania
ilościowegoaminokwasów
niezbędnych
w produktach
spożywczychi ich zestawach.
Stosujęchro-
matografię jednokierunkową spływową, bibułę
Whatmana Nr 1 i 3
przeważnie buforowaną,
rozpuszczalniki wg McFarrena (1) i
technikęrozdzielania i
ilościowegooznaczania
opisanąprzez McFarrena i Fishera Dorfla (2).
Ponieważ
w
wstępnychbadaniach
otrzymałamwyniki
rozbieżneo
dużymrozrzucie,
rozpatrzyłam dokładniejwarunki, w jakich
się znajdująaminokwasy wzorcowe w trakcie
postępowaniachromatogra- ficznego. Zmiany
dotycząprzede wszystkim sposobu przygotowania
arkuszy
bibułyi ich umieszczania w komorze chromatograficznej.
Jako komory
służąmi naczynia akumulatorowe o wymiarach
około20 X 22 X 50 cm. Daje
sięw nich
umieścićw dwóch rynienkach cztery arkusze
bibuły szerokościmaks. 16 cm. Sposób zawieszenia rynienki i zanurzenia w niej arkusza przedstawiony jest na ryc. la, lb. Obok
pełnych
arkuszy
wprowadziłamwidoczne na tych fotografiach arkusze
wycięte
w specjalny sposób,
zbliżonydo sposobu Matthiasa (3);
zwężeniepod punktami startu naniesionego na
bibułęroztworu w niektórych przypadkach poprawia
rozdział składników.Przy zastosowanych przeze
Ryc. la.
104
B. Muszkatowa.Nr 2
Ryc. lb. Ryc. 2a.
mnie
wycięciacharkusz stanowi
całość,podczas gdy u Matthia sa jest on
rozcięty
do
końca,przez co trudniej jest nim
operować.Do
oznaczeń ilościowychkorzystniejsze jest stosowanie
dużycharku- szy o kilkunastu punktach startowych w celu naniesienia roztworó\,- aminokwasów wzorcowych o kilku
stężeniachobok roztworów bada- nych (2). Nie
pozwalałmi na to jednak zbyt
małyrozmiar komór. Zagad- nienie
:rozwiązałamw sposób przedstawiony na r yc . 2a i 2b. Arkusz
Ryc. 2b.
zwinięty
w rulon obejmuje
płytkęPetri
(średnicy15 cm), która jest umieszczona w komorze na cylindrze szklanym o
wysokości większejod
długościarkusza o kilka cm.
Wyciętew górze arkusza
zębyzanurzone
są
w rozpuszczalniku
znajdującym sięw
płytcei
doprowadzajągo do punktów startowych.
Wewnątrz dużej płytkiwidoczna jest mniejsza.
przytrzymująca zęby bibuły. Posługując się
tymi
urządzeniamizbada-
łam
zachowanie
się6
niezbędnychaminokwasów wzorcowych: treoniny.
lizyny, walin y, m etioniny, leucyny i izoleucyny w reakcji barwne j po-
legającej
na
połączeniuna bibule aminokwasu z
ninhydrynąi skomplek-
sowaniu
powstałegobarwnika z
-miedzią dwuwartościową.Kompleks
Nr 2
Skład aminokwasowych białek105
eluowałam
metanolem i
oznaczałam ekstynkcjęeluatu w kolory metrze Bauscha-Lomba przy A - 510 mµ .
Zbadałam zależności między stężeniem a
ekstynkcjądla
każdegoz aminokwasów:
1) naniesionego na
czystą nietraktowaną bibułęi poddanego r ea kcjom barwnym i elucji
bezpośredniow punkcie naniesienia;
2) naniesionego na
bibułę traktowaną,tj.
buforowaną(lub nie , w przypadku lutydyny), po której
przeszedłw komorze chromatogra - ficznej i
został usuniętyrozpuszczalnik. W punkcie naniesienia przepro-
wadziłam reakcję
barwne i
elucję;3) wydzi elonego z ekwimoralnej miesza niny 18 aminokwasów.
Mieszaninę
te
nanosiłamw kilku
stężeniachna
bibułę buforowaną(lu:b nie, w przyp. lutydyny).
Rozwijałamchromatogram,
wywoływa łam ninhydrynę, wycinałamplamy , badanego aminokwasu, a na skraw- kach
tworzyłamkompl eks z
miedzią,który
eluowałam.W granicach
stężeńod 1,5 · 10-s M do 9 · 10-ll M
otrzymałamtrzy
zależności
prostoliniowe dla
każdegoaminokwasu:
E = A1 -1- B1 C, E = A2 + B2 C i E = Aa + B:i C, gdzie E = E
510 :10\ C -
ilośćaminokwasu w punkcie startu.- Parametry prostych
obliczyłam metodą
najmniejszych kwadratów.
WartościA nie zawsze
są
równe zeru, pomimo
uwzględnienia ślepejpróby.
Tabela I
S t r a t y a m i n o k w a s ó w
ro
I
INr Aminokwas
I i::
i
oo ro >, Walina ·- ro
Il) c::: N
l
~ i::'"' · - J :s·a
E-< i:: I I
Rozpuszczalnik Fenol Lutyd.-woda m-krezol pH 12 (2: 1) pH 8,4
I Leucyna/ Izoleu-
...
cyna
alk. n. but.-benz.
(1: 1) pH 8,4
- - -·-··· .... - - - - - 1- - - - - --- ---··--- -- - --
B,-B~
Straty I=--' --- · 100
%
B, 12
o
- - - -- - - :--- ---·-
14 48
1 i
40
B,-B" 29
II Straty II= --- · 100 % 22 13 20 23
B, '
14 34
8 6
- - -- -- -- -- ---!- --- -- ·- - ---- - ~ - - -·~ -
!
III Straty Ila= ~J=B, · 100
%
33I
22. 15 38 39 9B, 10
18*)
I
- 2*) 34*)I
* Wyniki Fishera i Dorfla (2).
W tabeli I
podajęspadki jednostkowej ekstynkcj i B,
wyrazaJącestraty aminokwasów: w rubryce I - spowodowane ewentualnym bufo-
rowaniem
bibułyi
obecnościąna niej rozpuszczalnika (straty I), w rub-
ryce II - spowodowane rozwijaniem <?hr~matogramu w dany m roz-
106
B. MuszkatowaNr 2
puszczalniku i usuwaniem tego ostatniego w
przepływiepowietrza w 50 do 60° (straty II) w procentach
wartości wyjściowych (B1).Straty I + II
stanowią całośćstrat chromatografii. W rubryce III
podajęstraty IP odniesione do ekstynkcji otrzymanych ·na bibule traktowanej bez rozwijania (B2), tak jak to robili Fischer i Dorfel.
Ogólnie
biorąc otrzymałam dużestraty aminokwasów . Obecnie prze- prowadzam dalsze badania nad ich
obniżeniem.Wydaje
się, 'Że wartościekstynkcji punktu 1)
postępowania należałoby uważaćza
wyjściowe.Wówczas
można przeprowadzić głębszą analizęstrat aminokwasów w czasie chromatografii; np.
już zetknięciesubstra-
tów z
-bibułą traktowanąro-krezolem buforowanym
-obniża wydajnośćreakcji barwnych o
przeszło 4QIO/o(walina, metionina).
Należy
zastrzec,
żeprzedstawione
zależności odnoszą siędo konkret- nych stosowanych przeze mnie warunków.
PEJ~'JlhTAThl flEPBblX Jv1ETO,LI.H4ECKl-1X r1POl3 XPOMATOl'PA<1>114ECKOro OTTPE)lEJTEHl-151 EEJlKOB AMYIHOKHCJTOT
B. M u s z k a t o w a
RESULT OF THE PRELIMINARY METHOD TESTS IN THE FIELD OF PAPER CHROMATOGRAPHY FOR INVESTIGATIONS ON THE AMINOACID
COMPOSITION OF PROTEINS PISMIENNICTWO
1. McFarren E.: Ana!. Chem„ t. 23, str. 168, 1951. - 2. Fisher F. G. i Dorfel H.:
Bioch. Ztschr., t. 324, str. 544. 1953. - 3. Matthias W.: Naturwiss., t. 41, str. 17, 1954.