Amplicon sp. z o. o. • ul. Klecińska 125 • 54-413 Wrocław, Polska • NIP: 8943052339 www.amplicon.pl • email: contact@amplicon.pl • tel. +48 739 223 268
AmpliTest Chlamydia/Chlamydophila (Real Time PCR)
Zestaw do wykrywania sekwencji DNA specyficznych dla bakterii z rodzajów Chlamydia i Chlamydophila
techniką Real Time PCR
Objętość pojedynczej reakcji: 20 µL
Zestaw jest produkowany w dwóch wariantach: na 50 oraz na 100 reakcji.
Przed użyciem zestawu należy uważnie zapoznać się z niniejszą instrukcją.
Nr kat.: Wielkość zestawu:
BAC18-50 50 reakcji BAC18-100 100 reakcji
2 ZASTOSOWANIE
Zestaw AmpliTest Chlamydia/Chlamydophila (Real Time PCR) jest przeznaczony do wykrywania sekwencji specyficznych dla bakterii z rodziny Chlamydiaceae w próbkach DNA uzyskanych z tkanek, linii komórkowych i wymazów. Do rodziny Chlamydiaceae są zaliczane dwa rodzaje: Chlamydia i Chlamydophia. W celu uniknięcia problemów z wydajnością reakcji Real Time PCR próbki DNA powinny być przygotowane przy użyciu metod pozwalających otrzymać wysokiej jakości DNA pozbawiony inhibitorów reakcji PCR. Zalecane są zestawy do izolacji DNA oparte o złoża krzemionkowe (tzw. zestawy kolumienkowe).
ZAKRES STOSOWANIA
• Badania i rozwój (B+R)
SKŁADNIKI ZESTAWU
Nazwa Opis Ilość
(50 reakcji) Ilość
(100 reakcji) Kolor wieczka RM Mieszanina reakcyjna 2 × 300 µL 4 × 300 µL Zielony
PC Kontrola pozytywna 2 × 50 µL 4 × 50 µL Czerwony NC Kontrola negatywna 2 × 50 µL 4 × 50 µL Niebieski Water Woda 2 × 500 µL 4 × 500 µL Biały
TRANSPORT i PRZECHOWYWANIE
• Transport odbywa się w suchym lodzie. Po otrzymaniu przesyłki należy ją natychmiast rozpakować.
• Składniki testu przechowywać w -20°C.
• UNIKAĆ EKSPOZYCJI SKŁADNIKA RM NA ŚWIATŁO;
• Unikać wielokrotnego zamrażania i rozmrażania składników testu w szczególności składnika RM. Trzy cykle zamrożenia i rozmrożenia składnika RM nie wpływają znacząco na jakość wyników.
• Nie używać składników testu po upływie daty przydatności do użycia.
3 ZASADA DZIAŁANIA
Zestaw AmpliTest Chlamydia/Chlamydophila (Real Time PCR) zawiera startery namnażające fragment genomu bakterii z rodziny Chlamydiaceae. Detekcja obecności bakteryjnego DNA następuje dzięki specyficznej sondzie typu TaqMan®, która przyłączając się do powstającego amplikonu (powielanego fragmentu bakteryjnego DNA) ulega hydrolizie. Podczas hydrolizy z sondy jest uwalniany barwnik fluorescencyjny FAM, który jest następnie wykrywany przez układ optyczny aparatu do Real Time PCR. Odpowiednio dobrane sekwencje starterów i sondy zapewniają wysoką specyficzność reakcji.
W celu zwiększenia wiarygodności wyników składnik RM w zestawie AmpliTest Chlamydia/Chlamydophila (Real Time PCR) zawiera kontrolę wewnętrzną (egzogenny fragment DNA) oraz układ starterów i sondy do jej namnożenia i detekcji. Detekcja kontroli wewnętrznej odbywa się dzięki uwalnianiu przez sondę barwnika fluorescencyjnego HEX. Obecność kontroli wewnętrznej pozwala na monitorowanie prawidłowego przebiegu reakcji Real Time PCR. Amplifikacja kontroli wewnętrznej nie wpływa na wydajność wykrywania sekwencji specyficznej dla Chlamydiaceae. Pozytywny wynik kontroli wewnętrznej stanowi potwierdzenie prawidłowego przebiegu reakcji Real Time PCR.
4
POTRZEBNY SPRZĘT I DODATKOWE MATERIAŁY
• Aparat do Real Time PCR:
LightCycler 480 (Roche) LightCycler 96 (Roche) LightCycler 2.0 (Roche)
RotorGene 3000/6000 (Qiagen)
Inne aparaty umożliwiające detekcję barwników fluorescencyjnych FAM i HEX.
Zestaw AmpliTest Chlamydia/Chlamydophila (Real Time PCR) nie zawiera barwnika normalizacyjnego ROX. W przypadku urządzeń wymagających takiej normalizacji należy do mieszaniny reakcyjnej dodać barwnik ROX do odpowiedniego stężenia. Barwnik ROX nie jest dołączony do zestawu.
• Probówki reakcyjne (probówki PCR, płytki PCR, kapilary w zależności od posiadanego aparatu do Real Time PCR)
• Wirówka do probówek reakcyjnych
• Wirówka stołowa (mikrowirówka)
• Pipety automatyczne w zakresie 1-1000 µL
• Sterylne końcówki z filtrami do pipet automatycznych
• Zestaw do izolacji DNA
W zależności od użytego zestawu do izolacji DNA może być potrzeby dodatkowy sprzęt i materiały.
IZOLACJA DNA
Zebrać odpowiednie do badania próbki, a następnie wyizolować DNA. Ilość potrzebnego materiału zależy od użytej metody izolacji DNA. Do izolacji DNA zaleca się stosowanie zestawów opartych o złoża krzemionkowe (tzw. zestawów kolumienkowych), gdyż zapewniają one uzyskanie próbek DNA o odpowiedniej jakości pozbawionych inhibitorów reakcji PCR. W przypadku innych metod izolacji preparat DNA może zawierać związki, które istotnie zmniejszają wydajność reakcji PCR. Prowadzi to do obniżenia czułości testu, a w skrajnych przypadkach do braku amplifikacji DNA. Próbki DNA należy przechowywać w +4°C (krótki okres przechowywania) lub w -20°C (długi okres przechowywania).
5 REAKCJA REAL TIME PCR
1. Określić liczbę próbek DNA poddawanych analizie (n).
2. Rozmrozić składniki testu. Po rozmrożeniu składników dokładnie wymieszać zawartość probówek i krótko je zwirować. Składniki po rozmrożeniu przechowywać w +4°C lub na lodzie. UNIKAĆ EKSPOZYCJI SKŁADNIKA RM NA ŚWIATŁO.
3. Określić ilość DNA dodawanego do reakcji (x µL).
Optymalna ilość DNA w reakcji wynosi 100-200 ng. Ilość DNA dodawanego do reakcji nie powinna przekroczyć 500 ng. Duże ilości DNA dodanego do reakcji PCR hamują aktywność polimerazy DNA i obniżają czułość testu. Typowo 100-200 ng DNA jest zawarte w 1-5 µL próbki DNA uzyskanej przy użyciu zestawu kolumienkowego.
4. Dokładnie wymieszać ze sobą (n + 3) × 12 µL mieszaniny reakcyjnej RM oraz (n + 3) × (8 - x) µL wody.
5. Do n + 2 probówek reakcyjnych (probówek PCR, kapilar, studzienek na płytce itp.) nanieść po (20 – x) µL przygotowanej mieszaniny.
6. Do n probówek reakcyjnych dodać po x µL przygotowanych próbek DNA. Do jednej z pozostałych dwóch próbówek reakcyjnych dodać kontrolę negatywną NC, a do drugiej kontrolę pozytywną PC. UWAGA: Kontrolę pozytywną należy dodać jako ostatnią.
7. Zamknąć probówki reakcyjne, a następnie krótko je zwirować.
8. Probówki reakcyjne umieścić w aparacie do Real Time PCR i wykonać reakcję według następującego protokołu:
Denaturacja wstępna 95°C 5 min
Amplifikacja (45 cykli) 95°C 10 s 58°C 25 s*
Schłodzenie aparatu 30-40°C 30s (zależnie od typu aparatu)
*Na końcu tego etapu ustawić odczyt fluorescencji w kanałach dla FAM i HEX.
Kanał dla FAM służy do wykrywania sekwencji specyficznej dla bakterii Chlamydiaceae. Kanał dla HEX służy do wykrywania kontroli wewnętrznej.
6 INTERPRETACJA WYNIKÓW
L.p. Rodzaj próbki FAM HEX Wynik
1 Kontrola pozytywna + + Prawidłowy 2 Kontrola negatywna - + Prawidłowy 3 Oznaczenie 1 + + Dodatni
4 Oznaczenie 2 - + Ujemny
Brak odczytu w kanale dla HEX* oznacza, że reakcja Real Time PCR nie przebiegła w sposób prawidłowy. Jednoczesny brak pozytywnego odczytu fluorescencji w kanale dla HEX w przypadku kontroli pozytywnej i negatywnej wskazuje na złą jakość Zestawu AmpliTest Chlamydia/Chlamydophila (Real Time PCR) (niewłaściwe przechowywanie, transport, wygaśnięcie terminu przydatności do użycia itp.) Pozytywny odczyt fluorescencji w kanale dla HEX w przypadku kontroli pozytywnej i negatywnej oraz brak pozytywnego odczytu w kanale dla HEX w przypadku badanych próbek DNA oznacza ich złą jakość (obecność związków hamujących reakcję PCR) lub zbyt dużą ilość DNA użytego w reakcji. W tym przypadku należy do reakcji dodać mniejszą objętość próbki DNA, jednocześnie dodając taką objętość wody, aby końcowa objętość reakcji wynosiła 20 µL.
*Przy bardzo wysokim mianie bakterii może wystąpić brak odczytu w kanale HEX przy jednoczesnym odczycie w kanale FAM. Zaleca się wtedy powtórzenie reakcji ze zmniejszoną (10-100-krotnie) ilością DNA dodanego do reakcji.
UWAGI DODATKOWE
• Zastosowane sondy TaqMan® posiadają tzw. ciemne wygaszacze (Dark Quenchers), które nie generują dodatkowych sygnałów fluorescencyjnych. W aparatach, które tego wymagają (np. RotorGene 6000), jako typ wygaszacza należy wybrać opcję „none”.
• Próbki DNA uzyskane z pojedynczych izolacji można ze sobą pulować i wykorzystywać w pojedynczym oznaczeniu. W tym celu równe objętości próbek DNA (np. 10 µL) przeznaczonych do pulowania należy ze sobą dokładnie wymieszać i użyć jako matrycy w reakcji Real Time PCR. Należy jednak pamiętać, że pulowanie próbek DNA zmniejsza możliwość uzyskania
7
pozytywnego wyniku w przypadku próbek zawierających niewielką ilość bakterii.
• Nie stosować objętości reakcji mniejszych niż 20 µL. Zmniejszenie objętości reakcji powoduje znaczące zmniejszenie czułości testu.
• Należy zachować szczególną ostrożność podczas izolacji DNA, a materiał biologiczny uzyskany od chorych zwierząt traktować jako potencjalnie zakażony.
• Izolację DNA oraz detekcję obecności bakterii Chlamydiaceae powinien wykonać odpowiednio przeszkolony personel w laboratorium spełniającym odpowiednie wymogi i dopuszczonym do pracy z zakażonym materiałem biologicznym. Należy zwrócić szczególną uwagę, aby podczas izolacji DNA nie doszło do krzyżowego zanieczyszczenia próbek DNA izolowanych równolegle.
• W celu maksymalnego wyeliminowania fałszywych wyników powinno się przestrzegać następujących zasad:
- w miarę możliwości wyznaczyć osobne stanowiska do izolacji DNA, przygotowania reakcji Real Time PCR oraz jej wykonania/analizy.
- pomiędzy etapami izolacji DNA, przygotowania reakcji Real Time PCR należy dokonać zmiany odzieży laboratoryjnej (fartucha) oraz zmiany rękawiczek jednorazowych.
- powierzchnię stanowisk do izolacji DNA i przygotowania reakcji Real Time PCR należy przemywać środkami usuwającymi/niszczącymi DNA.
- do pipet automatycznych należy stosować wyłącznie sterylne końcówki z filtrem.
- podczas przygotowywania reakcji Real Time PCR kontrolę pozytywną PC należy dodać jako ostatnią. Przed jej dodaniem, w miarę możliwości, należy zamknąć probówki z dodanymi próbkami DNA i kontrolą negatywną NC.
TaqMan® jest znakiem towarowym zastrzeżonym dla Applied Biosystems, Inc.
LightCycler® jest znakiem towarowym zastrzeżonym dla Roche Diagnostics GmbH.
