UN I VE R
S
IT
AT
IS MARIAE CURIE-SKŁODOWSKA
LUBLIN
— POLONIA
VOL. ХШ. 22 SECTIO D 1958
Z Zakładu Mikrobiologii Wydz!ału Farmaceutycznego Akademii Medycznej w Lublinie i z Lubelskiej Wytwórni Surowic i Szczepionek:
Kierownik: dr Włodzimierz Nicewicz
Włodzimierz
NICEWICZ
Badanie własności
patogennychprzesączów
zawiesintkankowych ze
zwierząt zakażanych prątkamigruźlicy
szczepu
,,Lublin
44”.
Исследования над патогенными свойствами фильтратов тканевых взвесей, выделенных из животных, зараженных туберкулезными
палочками штамма „Люблин 44“
Investigations on the Pathogenic Properties of Tissue Suspension Filtrates Obtained from Animals Infected with Tubercle Bacillus
of the Strain „Lublin 44“
Postacie ziarniste prątków gruźlicy były opisywane przez cały szereg autorów poczynając od R. Kocha, H. Mucha, A. F o n t e s a i innych. Zagadnienie to poruszane było również w późniejszych latach głównie przez Vaudremera, Calmette’a i P. Hauduro y’a. Do najbardziej wnikliwych prac na ten temat należą prace M. Kah na, w których autor dopatruje się pewnej cykliczności w rozwoju prątków kwasoodpornych.
Autorzy ostatniego dziesięciolecia podchodzą do zagadnienia nie tylko od strony morfologicznej, ale i patogenetycznej, badając własności chorobotwórcze przesączów z hodowli prątków lub też przesączów z zawiesin roztartych tkanek zwierząt za
każanych zjadliwymi szczepami prątków gruźlicy.
S. R. Rozenthal i wsp. (12, 13, 14, 15, 16, 17) starali się dowieść, że formy ziarniste są ogniwami w cyklu reprodukcji prątków, przy czym pojawienie się form ziarnistych w cyklu rozwojowym zachodzi dopiero w warunkach nie sprzyjających dla drobnoustroju. Aktywność filtratów hodowli prątków gruźlicy typu bydlęcego badali Nègre i Bretey (10). Stwierdzili oni własność alergizującą przesączów.
Po dożylnym wstrzyknięciu filtratów znajdowano w płucach królików i w węzłach chłonnych świnek morskich prątki kwasoodporne. Posiewy tkanek tych zwierząt nie dały wyników pozytywnych. B r i e g e r i wsp. wysuwają również tezę, że w tkankach zwierzęcia zakażonego prątkami gruźlicy i wrażliwego na zakażenie, zarazek może przejść w postać ziarnistą, zachowującą własności patogenne i zdolną do rewersji (1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9). Autorzy ci badali wyciągi wodne z roztartych tkanek zakażanych zwierząt. Stwierdzili oni również ogromną szybkość i obfitość wzrostu prątków w hodowlach tkankowych in vitro, przy jednoczesnym słabym namnażaniu prątków w tkankach zwierząt żywych. Nieznany zatem zespół czyn
ników istniejący w organizmie żywym, a nieobecny w tkance hodowanej, musi wpływać sztucznie hamująco na proces rewersji.
BADANIA WŁASNE
Próbowano poczynić
obserwacje nad
wrażliwością zwierząt(króliki i
świnkimorskie)
nainiekcję przesączami
ztkanek gruźliczych zwierząt
zakażanychszczepem gruźlicy
„Lublin 44”. Szczep Mycobacterium
tuber culosis
„Lublin 44”został wyizolowany
z dzikichmyszy (Microtus arva-
lis) w r. 1951(11).
Szczepprzesiewano z kartofla na
podłoże Sautona, po 14-dniowejhodowli
w temp. 37°C zdejmowano z podłoża częśćkożuszka, odważano
masę bakteryjną nawadze
analitycznej,rozcierano perełkami
metalowymii sporządzano inoculum
wten sposób, by
1ml zawierał
1 mgprątków. Zaszczepiono 6
królikówdawkami
1 mg i0,1
mgprątków
do żylnie
w żyłębrzeżną
uchaoraz 12 świnek morskich
dawkami 1 mg>
i0,1
mg prątkówpodskórnie w
praweudo.
Zjadliwość
szczepu dla królikówi
świnek morskich1.
Króliki: szczepwykazał zjadliwość
dlakrólików znacznie w dal
szym ciągu
niższą niż szczepstandardowy
typu bydlęcego „Valle”.
Zwie
rzęta czuły siędobrze
przez okres trzech ipół
miesiąca niezależnieod
zastosowanych dawek.Króliki nie traciły
nawadze i nie
zareagowały natuberkulinę Kocha w rozc.
1:1000. Króliki zabitopo 100—115
dniach odzakażenia.
Na
sekcji stwierdzono w płucachliczne ogniska
szkliste i gru-zełki
wielkości główkiszpilki,
wynaczynienia podopłucne,nieznaczny
obrzęk śledzionyoraz
powiększeniewęzła wnękowego.
W innychorga
nach zmian makroskopowych
nie
stwierdzono.W preparatach mikroskopowych
z roztartych
tkanek znajdywano pojedyncze prątkico kilka pól
widzenia(płuco).
Preparaty
z gruzełków wykazały obecność
prątkóww każdym
polu widze
nia. Hodowlęz
wysianychtkanek
napodłoże
Löwensteinauzyskano po
18 do 35 dniach.2.
Świnki morskie zabijanopo
40 do 50dniach
od zakażenia. Unie
których świnek
stwierdzono
owrzodzenia w miejscuiniekcji. Po mie
siącu świnki reagowały
na tuberkulinęKocha
w rozc. 1: 1000.
Na sekcjach stwierdzono znaczne
powiększeniepachwinowych
węzłówchłonnych,
które zawierałyropną treść.
Wątroba: powiększona,o
mozaikowej powierzchni ipostrzępionych brzegach.
Obecneogniska
martwicze. Płuco: wielkośćniezmieniona,
powierzchnia chropawa, wi
doczneogniska nącieków. Płuco
powietrzne.Śledziona: bardzo powięk
szona (2X4
cm),
mocno przekrwiona, o powierzchnigładkiej
iciemnej.
W niektórych wypadkach widoczne
gruzełki na powierzchnii
wprze
kroju.
W nerkach
zmiannie
stwierdzono.W
preparatachmikroskopowych
zroztartych tkanek
(płuco, wątroba,śledziona i
węzłychłonne)
stwierdzano nieznaczną ilość prątków w każdympolu
widzenia.Posiewy
roztartychorga
nów
na podłożuLöwensteina dały wyniki pozytywne po 20
—25 dniach.Opis preparatów histologicznych
z
tkanekzwierząt
zakażonychszczepem
gruźlicy„Lublin
44”1. Królik: Wątroba:
struktura beleczek wątroby zatarta,
co możnaprzypisać zmianom zwyrodnieniowym
lubteż daleko posuniętej autolizie.
W
najbliższym sąsiedztwienaczyń,
przebiegającychna
obwodziezrazików
stwierdzasię
miejscami dośćobfity naciek komórkowy, w
którego skład wchodząjednojądrzaste
komórki o typielimfocytów
i. komórekplazma-
tycznych.Płuco: w
preparacie stwierdzono jedno
dużeognisko,
którego środek stanowiąelementy komórkowe,
naciekowe,ulegające
rozpadowi. Na obwo
dzieognisko
odgraniczone jest szerokim pasem nieswoistej ziarninyza
palnej, odgraniczającej je
ostrood pozostałego miąższu płucnego. Naj
bardziej obwodowe
częściziarniny są obficie przepojone
wysiękiemko
mórkowym
i
bogatounaczynione. Nie
stwierdzono cechswoistego
zapalenia.2.
Świnka morska: Wątroba:stwierdzono
liczne ogniskaumiejsco
wione głównie na
obwodzie zrazików,zbudowane
z namnożonychkomó
rek histiocytarnych oraz fibroblastów. W
obrębiewielu ognisk
spotykasię
fragmenty beleczek wątrobowych lubteż
komórki wątrobowe ulega jące
obumarciu. Znajdującesię
w wieluogniskach przewody żółciowe wykazują
namnożeniekomórek
nabłonkowych.Nie
stwierdzasię w obrę
bie opisanych
guzów martwicy ani też
zwapnienia,brak
również komó rek olbrzymich.
Całość zmian histologicznych
przemawiaza swoistością
sprawycho
robowej,
brak jednakcharakterystycznych
momentówhistologicznych nie
upoważnia dorozpoznania gruźlicy,
gdyż podobne zmianymożemy rozpoznawać również
u gryzoni przyschorzeniach określanych
ogólnie pseudotuberculosis ipowodowanych
innymi czynnikamichorobotwór
czymi.
Przygotowanie zawiesin i
przesączów tkankowychTkanki gruźlicze
świnek
morskichi
królikówrozcierano bardzo
do
kładnie
zjałowym piaskiem,
dodając stopniowo mniej więcej tę samąilość
płynufizjologicznego.
Roztartąmiazgę
odrzucano, a lekko mętnypłyn oczyszczano
poddającgo kilkakrotnemu
wirowaniuprzy 6
tys.obr/min. w
ciągu
1/2godz. Klarowne
wyciągiprzesączono przez
świece Chamberlaina L3.Przesącze badano
podmikroskopem barwiąc preparaty
metodą Ziehl-Neelsenai nie
stwierdzonożadnych elementów
morfotycz-nych. Każdą
próbę przesączuwysiewano
na podłożeLöwensteina, Dor-
seta orazpodłoże ziemniaczane
dlakontroli
jałowości.Wszystkie
posiewyna jałowość
przesączówtrzymano w termostacie w
temp. 37°Cprzez
okres do2 miesięcy.
Szczepienie przesączami i
obserwacjazwierząt
Doiniekcji
królikówużyto
przesączepochodzące
zpłuc królików.
Do iniekcji
świnekmorskich
użyto przesączepochodzące z
płuca,wątroby i
śledziony świnek morskich. Dla królikówzastosowano iniekcje dożylne
w brzeżną żyłęucha w dawkach wzrastających
(0,1—
0,5)w odstępach tygodniowych.
Świnkommorskim
wstrzykiwanoprzesącz podskórnie
wlewe
udo wdawkach
0,5ml
4-krotnie wodstępach tygodniowych.
Zaszczepione
zwierzęta nie
reagowały na tuberkulinęKocha
wrozc.
1 : 1000
po
upływiejednego miesiąca
odzakażenia.
Mimo dużych
dawek szczepiennych zwierzętaczuły
się dobrzeprzez
cały czasobserwacji, tzn. przez
2do
3 miesiące. U świnek morskich, wa
żonych w odstępach tygodniowychstwierdzono
ubytekwagi
odrazu po pierwszych dawkach.W
tym czasie u niektórych świnekzauważono nie
znaczne
powiększenie
pachwinowych węzłówchłonnych. Mniej więcej po trzech tygodniach od ostatniego zaszczepienia
wagaświnek
poczęła rosnąć, a bezpośrednio przed zabiciemprzekraczała na
ogółwagę począt
kową.
Po
trzechmiesiącach
obserwacji świnki zabito.Zmiany
gruźlicze u
zwierząt szczepionychprzesączami zawiesin
tkankowychŚwinki
morskie:W
niektórych tkankach świnek morskich można byłostwierdzić
nieznacznezmiany
gruźlicze. Dotyczyto
główniepłuc i śle
dziony.
W
płucach wykrytoniewielkie przestrzenie szkliste i częściowe
zaciemnieniepłatów. Śledziona parokrotnie
powiększonai chropowata, wątroba zaś, w
przeciwieństwiedo
głębokichzmian
po normalnymzaka
żeniu, wyglądała
tutaj zewnętrznie
zupełnie normalnie. Badania mikro
skopowe barwionychpreparatów wykazały
obecnośćк w a
s ood
porny
c
hprątków
w śledzioniei
wwęzłach chłon
ny
ch, w
każdymprawie polu
widzenia,leżące
pojedynczoi w
skupieniach.Nieliczne prątki stwierdzono
również wprepara
tach
z wątroby. W
tkance płucnejżadnych
elementów kwasoodpor-nych nie stwierdzono.
Króliki:
Płuca
królikówpowietrzne, w środkach
płatów zaciemnione,na brzegach widoczne
jaśniejsze plamy. W preparatachmikro
skopowych ze
skrawków płucstwierdzono
obecnośćpojedynczych prątków
cokilka pól
wi d z e
ni
a.W śle
dzionie, wątrobie i nerkach
królikównie stwierdzono żadnych
zmian.W
pojedynczymwypadku
na przedniej stronie ściany żołądka znalezionokilka
gruzełków wielkości ziarenrzepaku,
wktórych
stwierdzono prątki pojedyncze iw skupieniach.
Do szczepień przesączami użyto
12
świnek morskichi 6 królików.
Zmiany makroskopowe
w tkankachposzczególnych
organów byłymniej więcej jednakowe.
Natomiast prątki kwasoodporne stwierdzono wpre
paratach mikroskopowych
z
roztartychskrawków
organówtylko
u pew
nejczęści
zwierząt, a mianowicie u dwóch królików ipięciu świnek morskich.
Ze
wszystkich
badanych tkanekświnek
morskichi
królików nasta wiono mikrokultury
szkiełkowe, któreobserwowane
przez12 dni dały wyniki negatywne.
Wykonano również posiewtkanek na podłoże
Lówen- steina, na
którymrównież nie
uzyskano hodowli przez okrestrzech mie
sięcy
w
temp. 37°C. Dwie świnkipozostawiono
„naprzeżycie” celem
przekonania się czyzakażenie
przesączemmoże
doprowadzićświnki do
śmierci gruźliczejpo
dłuższym okresieczasu.
Świnki te przez dalsze8 miesięcy czuły się dobrze,
rozwijającsię podobnie
jak zdroweświnki
whodowli. Zostały
zabite po8 miesiącach.
Na sekcjinie
stwierdzonozewnętrznie zmian gruźliczych.
Wjednym wypadku
—w śledź onie,
znaleziono nieliczne prątki kwasoodporne.Opis
preparatówhistologicznych z
tkanekzwierząt
szczepionychprzesączem
tkankowym
Królik:
W
płucachkrólików (ryc. 1,
2,3) stwierdzono obfite nacieki komórkowe
szczególnie dookoła oskrzelii oskrzelików,
tworzącemiej
scami ogniskowe skupienia. Ściany
oskrzelików są zgrubiałe. Wśród po
wietrznegomiąższu płucnego
obserwujesię poszczególne
pęcherzyki płucne lubteż ich skupienia
wypełnionewysiękiem
komórkowym,przy czym
widoczny jest równieżw tych
miejscach rozplemelementów
łącz-notkankowych. Miejscami pęcherzyki
płucnesą mocno rozszerzone,
ścian ki
ich sąpoprzerywane (rozedmowe). Całość zmian w płucach
dajeobraz zapalenia
okołooskrzelowego.W wątrobie — na tle
ogólniepanujących
zmianwstecznych o cha
rakterze
zwyrodnienia — stwierdzasię dość
skąpenacieki
okołonaczy- niowei
limfocytarne.W
warstwie korowej
nerki stwierdzasię nielicznie reprezentowane
komórkinaciekowe
(limfocytarne) w tkanceśródmiąższowej. W śledzio
nie
zmiannie stwierdzono.
Ryc. 1. Królik szczepiony przesączem z zawiesiny tkankowej, dożylnie, w dawkach:
0,1, 0,2, 0,3, 04, 0,5, w odstępach tygodniowych. Płuco. Bardzo liczne nacieki komórkowe dookoła dwóch oskrzelików, których ściany są zgrubiałe. Przylegające pęcherzyki płucne nie wykazują żadnych zmian. Preparat utrwalony formolem 1 : 9,
barwiony hematoksyliną i eozyną. Mikrofotogr. ROW. Pow. 48 X.
Rabbit inoculated intravenously with tissue suspension filtrate in doses: 0.1, 0.2, 0.3, 0.4, 0.5, given in one-week intervals. The lung: very numerous cellular infiltra
tions round two bronchiales, the walls of which are thickened. The adjacent air cells show no changes. Preparation fixed in 1 : 9 formol, stained with haematoxylin
and eosin. ROW, 48 X.
Świnka
morska:W węzłach
chłonnychstwierdzono nieznaczny prze
rost tkanki łącznej
oraz
namnożenie komórekhistiocytarnych. W
wątro
bie— ogniska z namnożonych
komórek histiocytarnych. Budowabele- czek
wątrobowychzatarta, beleczki
ulegają obumieraniu.Śledziona przekrwiona. W
płucach i nercenie
stwierdzono odchyleńod normalnej
budowy.OMÓWIENIE WYNIKÓW
Wyniki opisanych
doświadczeńpozwalają
wysunąć przypuszczenie,że
jakieśprzesączalne
cząstki prątkówgruźlicy
posiadają cechę choro botwórczości dla
zwierząt wrażliwychna zakażenie
gruźlicze.Z
obserwowanych
zmian makroskopowychw
organachoraz z badań
histologicznychtkanek
zwierzęcych wynika,że
zjadliwość tychcząstek
jestznacznie
obniżona, a ichrewersje do postaci
bakteryjnejobserwuje
się tylko w
niektórychwypadkach.
Przesącze
zawiesin tkankowychnie
mogłybyć niestety
przebadanew mikroskopie
elektronowym celemstwierdzenia obecności cząstek
prze- sączalnychz
określeniemich
kształtów.Wykrycie
jednakw
organachzwierząt prątków kwasoodpornych
pozwalaprzypuścić,
że w organiz
machżywych
zwierząt musiałanastąpić przynajmniej
częściowaprze
miana postaci przesączalnej
w
postać bakteryjną prątka.Należałoby
jednakzastanowić się,
dlaczego po tak dużych dawkachszczepiennych
przesączów w tkankachzwierząt wykryto
tylkonieznaczną ilość
prąt
ków.Zjawisko to
możnaby uzasadniać tym,że
cząstki ziarniste,mogące się
znajdowaćw przesączach,
wprowadzonow to samo środowisko, z któ
rego
zostałyone
wyosobnione tzn.do organizmu wrażliwego
zwie
rzęcia. Żywy zaśorganizm
jestwłaśnie
podłożem, które zmuszaniejako
postać bakteryjną doprzejścia w
postaćziarnistą.
Tylkoniektóre
cząstki — biologicznienajbliższe fazie
komórkowej —mogły przejść w
postaćprątków
kwasoodpornych.Te świeżo
odtworzoneprątki stano
wić
mogą
wariant niewrażliwyna
obronne siły ustroju zwierzęcego.Ryc. 2. Królik szczepiony przesączem z zawiesiny tkankowej, dożylnie, w dawkach:
0,1, 0,2-, 0,3, 0,4, 0,5, w odstępach tygodniowych. Płuco. Część preparatu poprzed
niego, na którym widoczny jest wysięk komórkowy w pęcherzykach płucnych.
Preparat utrwalony formolem 1 : 9, barwiony hematoksyliną i eozyną. Mikrofotogr.
ROW. Pow. 180 X
Rabbit inoculated intravenously with tissue suspension filtrate in doses: 0.1, 0.2, 0.3, 0.4, 0.5 given in one-week intervals. The lung: Part of the preparat,’bn shown in Fig. 1; cellular infiltration is seen in air cells. Preparation fixed in 1 : 9 formol,
stained with haematoxylin and eosin. ROW, 180 X.
Ryc. 3. Królik szczepiony przesączem z zawiesiny tkankowej, dożylnie, w dawkach:
0,1, 0,2-, 0,3; 0,4, 0,5, w odstępach tygodniowych. Płuco; Ogniskowe skupienia nacieków komórkowych wokół częściowo widocznego oskrzeLika (na dole). Preparat utrwalony formolem 1 :9, barwiony hematoksyliną i eozyną. Mikrofotogr. ROW.
Pow. 330 X.
Rabbit inoculated intravenously with tissue suspension filtrate in doses: 0.1, 0.2, 0.3, 0.4, 0.5 in one-week intervals. The lung: focal agglomerations of cellular infil
trates round a partly visible bronchiale (at the bottom). Preparation fixed in 1 : 9 formol, stained with haematoxylin and eosin. ROW, 330 X.
Rozpad prątków na
ziarnistecząstki może być następstwem daleko
idącejzmiany środowiska. Podłoże sztuczne zapewnia
optymalnewarun
ki do
wegetacji
komórek bakteryjnych, do ich rozwojui zachowania wszystkich
cech właściwych danemugatunkowi.
Zchwilą
przejścia mikroorganizmu do żywegoorganizmu zwierzęcia
zmieniająsię warunki bytu
dladrobnoustroju, przy
czym zmianata
jest bardzoistotna. Od momentu iniekcji należy rozpatrywać nie układ zarazek-podłoże, a układ inny: zarazek
—gospodarz. Jest kwestią dyskusji
czy rozwój dalszych stosunkówmiędzy
drobnoustrojem, agospodarzem
rozpatrywać mamyjako walkę
o przewagęi
zwycięstwo, czyteż
rozumieć gojako dążenie obu ustrojów
do wzajemnego przystowaniasię i
współżycia.Każdy z
tychorganizmów,
stanowiących takodrębne
jednostkibiologiczne,
stajewobec
nowychwarunków
dodalszego bytu
ikażdy z
nichdyspo
nuje własnym
mechanizmem obrony, lub własnym sposobem przysto
sowania
się.Organizm zwierzęcia
mobilizujew
tymcelu
odpowiedni aparat komórkowyoraz
produkujeswoiste przeciwciała.
Drobnoustrójnatomiast,
zmieniającpostać,
„znika” rzekomo
wtkance
gospodarza,.stając
się,
prawdopodobnie,mniej wrażliwy
lub może niewrażliwyna
elementyobronne
zwierzęcia. Zahamowanie rozwojuprątków w tkance nie
należy zatemrozumieć
wtym sensie, że
prątkisą unieczynnione
w makrofagach lubsą przez nie
trawione. Drobnoustrójrozwija się dalej, tylko etap (faza) tego rozwoju
jest trudny do uchwycenia.Ujemny wynik
z
posiewów tkanek zwierząt szczepionych przesączami jestjednym z dowodów zmienności szczepu, który przeszedł
przezpostać ziarnistą i został
zniej odtworzony. Musiały zajść
głębokiezmiany
w fizjologiii biologii szczepu. Wyjaśnienie
tegociekawego zagadnienia
wymagajeszcze wielu
wyczerpujących badań. Dalszebadania
rzucąwię
cej światła na przebieg zakażenia gruźliczego,
usunąmoże
szeregnieja
sności
w klinicznych
obserwacjachgruźlicy oraz przyczynią się do
głęb szego
poznania biologiizarazka.
Panu Prof. Dr Alfredowi Trawińskiemu składam serdeczne podziękowanie za pomoc w pracy.
Panu Prof. Dr Tadeuszowi Zulińskiemu i Panu Adiunktowi Dr Tadeuszowi Szuperskiemu wyrażam podziękowanie za łaskawe przejrzenie i ocenę preparatów histologicznych.
PIŚMIENNICTWO
1. Brieger E. M., G lauert A. M.: Journ. Gen. Microbiol. 7, 3/4, 1952, 2. Brieger E. M.: Tubercle, 30, Nr 10, Nr 11, 1949, 3. Brieger E. M., Miles A. R., Cosslett E., Horne W.: Nature, vol. 168, Nr 4264, 1951, 4. B r i e- ger E. M., Cosslett V. E., dauert A. M.: Nature, 171, 211, 1953, 5. B r i e- g e r E. M., dauert A. M.: Tubercle, 34, (5), 1953, 6. B r i e g e r E. M., dauert A. M.: Tubercle, 35, 1954, 7. Brieger E. M., Fell H., Smith B.:
J. Hyg. Camb., 49, 189, 1951, 8. Brieger E, M.: J. Path. Bact., 57, 282, 1944-, 9. Brieger E. M., Cosslett V. E.: Nature, 164, 352, 1949, 10. Negre L., Br et e y J.: An. Past., T. 82, N;r 1, 1952, 11. Nicewicz Wl.: An. Univ. M.C.S.
Lublin 1952, 12. Reed C. I., Ro zen th al S. R., Reed B. P.: An. Past., T. 75, Nr 6, 1948, 13. Rozenthal S. R.: Arch. Path., 22, 1936, 14. Rozenthal S. R.:
Am. J. Dis. Child. 54, 1937, 15. Rozenthal S. R.: Univ, of Ill. Press edit. Urbana, 1938, 16. Rozenthal S. R., Heagan B.: An. Past. T. 88, Nr 4, 1955, 17. Ro
zenthal S. R., Heagan B.: An. Past. T. 88, Nr 5, 1955.
РЕЗЮМЕ
Автор занялся исследованием
патогенныхсвойствтканевых
филь
тратов, полученных путем растираниятуберкулезных
тканей, взве- шения вфизиологической жидкости,
центрифугированияи
фильтро вания через
свечу Чамберлана.У
кроликови
морскихсвинок
с привитымиуказанными
вы
шефильтратами
появились некоторые измененияв органах, напоми
нающие своим
характером
изменения вызываемыетуберкулезом.
На
гистологических препаратах не обнаружено специфических тубер кулезных процессов.
У
некоторых
животных спривитыми
теми жефильтратами
обнаруженомикроскопически наличие незначительного
количестваединичных
кислоупорных палочек,в
препаратах,приготовленных
изтканей внутренних
органов.Посевы
этихтканей на среды, употре
бляемые для
выращиваниятуберкулезных
палочек, дали отрицатель
ныерезультаты.
В
выводахавтором выдвинута
возможность превращенияпалочки Коха
вживом
животноморганизме
вгранулёзный
вид,как
ответ на защитную акцию, возникшую вживотном
организме. Обнару
жение кислоупорных палочекв тканях, зараженных
фильтратомуказывало
бына
возможность обратного превращениязернистых
частиц (фильтровальных) внастоящие туберкулезные палочки в сре
де живого
организма. Отрицательные
результаты выращивания наискусственных бактериальных средах
указываютна значительную изменчивость
штаммапосле перехода его через гранулёзную
стадию.ОБЪЯСНЕНИЯ К РИСУНКАМ
Рис. 1. Кролик с введенным внутривенно фильтратом из тканевой взвеси в до
зах; 0,1, 0,2, 0,3, 0,4, 0,5 — в недельных промежутках времени. Легкие.
Очень многочисленные клеточные инфильтраты вокруг двух бронхиолов, стенки которых подверглись утолщению. Прилегающие легочные альве
олы не обнаруживают никаких изменений. Препарат фиксирован формолом 1 :9, окрашен гематоксилином и эозином. Микрофотография ROW. Увел.
48х.
Рис. 2. Кролик с введенным внутривенно фильтратом из тканевой взвеси в до
зах: 0,1, 0,2, 0,3, 0,4, 0,5, — в недельных промежутках времени. Часть предыдущего препарата, на котором виден клеточный инфильтрат в ле
гочных альвеолах. Препарат фиксирован формолом 1: 9, окрашен гема
токсилином и эозином. Микрофотография HOW. Увел. 180х.
Рис. 3. Кролик с введенным внутривенно фильтратом из тканевой взвеси в до
зах: 0,1, 0,2, 0,3, 0,4, 0,5 — в недельных промежутках времени. Легкие:
очаговые скопления клеточных инфильтратов вокруг частично видного бронхиола (внизу). Препарат фиксирован формолом 1 : 9, окрашен гема
токсилином и эозином. Микрофотография ROW. Увел. ЗЗОх.
SUMMARY
The author investigated
pathogenic properties oftissue filtrates
obtai
ned by rubbing tuberculoustissues, suspending them
inphysiological
solution,centrifuging and
filtering throughChamberlain
candles.Rabbits
and guinea-pigs inoculated with the filtrates showed somechanges
in theorgans
resembling tuberculous changes. Inhistological preparations
no tuberculousprocesses
were found.In
some animals inoculated with filtrates the presenceof
asmall
quantityof
single acid-fastbacilli was
foundmicroscopically in
prepara tions
from tissuesof internal organs.
Cultures ofthese
tissues inthe
media used for tuberclebacilli gave
negativeresults.
The
author’
sconclusions
suggest the possibility ofthe
bacillipassing
into agranular form in the living animal organism as a
response tothe defence reaction of
the organismof the
animal. Thefact
thatacid-fast bacilli were
found in tissues infected with the filtratemight
pointto
thepossibility
ofa
reversionof granular (filtrable)
particlesinto
bacilliin
the mediumof
theliving organism.
Negative resultsobtained from
cul
tures onartificial
bacterial mediapoint
to a far-reaching mutabilityof the
strain after passing through thegranular
phase.Papier druk. sat. Ill kl. 90 g. Format 70x100 Druku 11 str.
Annales U.M.C.S. Lublin 1958. Lub. Druk. Prasowa—Lublin, Unicka 4. Zam. 518 2 II.59.
800 4- 125 egz. E-l Data otrzymania manuskryptu 2.11.59. Data ukończ, druku 28.VII.59