Wybór właściwego czasu
kwitnienia jest kluczowy dla
sukcesu reprodukcyjnego
roślin
Ewolucja doprowadziła
do powstania wielu
ścieżek regulujących
czas kwitnienia
Rośliny kwiatowe przechodzą fazę
wzrostu wegetatywnego
(wytwarzanie pędów i liści) i
fazę kwitnienia
, w trakcie której
wytwarzają organy służące do rozmnażania płciowego
• U roślin jednorocznych faza
wegetatywna zaczyna się w momencie kiełkowania nasion. Następująca po niej faza kwitnienia kończy się
starzeniem się i śmiercią rośliny.
• U roślin dwuletnich, faza wegetatywna
trwa przez pierwszy rok, w drugim roku następuje kwitnienie, które kończy się śmiercią rośliny.
• U roślin wieloletnich, kwitnienie
następuje co rok, przez wiele lat.
Wzrost wegetatywny pędu następuje w merystemie wierzchołkowym. Jest to masa niezróżnicowanych komórek na szczycie pędu. Podziały mitotyczne tych komórek
wytwarzają komórki, które różnicują w części pędu, liście, wtórne merystemy (zwane też pączkami bocznymi) – dają początek rozgałęzieniom pędu.
Kwitnienie jest regulowane przez wiele czynników
Kwitnienie wymaga
przekształcenia merystemu
wierzchołkowego w merystem
kwiatowy
Zależy to od:
•
Czynników wewnętrznych
•
Czynników zewnętrznych
Regulacja przez temperaturę
• Wiele roślin jednorocznych (np.
pszenica ozima) i dwuletnich ma opóźniony czas kwitnienia, jeśli nie przejdzie w trakcie zimy okresu zimowego przechłodzenia. Zmiany powodowane przez ten okres
zimowego przechłodzenia noszą nazwę wernalizacji.
• U wielu drzewiastych roślin
kwiatowych rosnących w klimacie umiarkowanym (jabłonie, bzy), kwitnienie wymaga uprzedniej ekspozycji na niską temperaturę. Drzewa te nie kwitną w klimacie
ciepłym, w którym nie ma wyraźnych zim.
Regulacja przez fotoperiod (stosunek długości dnia do
nocy)
• Fotoperiod jest wykrywany w liściach
(np. roślina X potrzebuje dnia o
długości co najmniej 8,5 godziny, by móc zakwitnąć). Jednak wystarczy, by tylko jeden liść był eksponowany na właściwy fotoperiod, aby kwiaty pojawiały się na całej roślinie.
• Liście produkują sygnał chemiczny -
florigen
, który jest transportowanydo merystemów wierzchołkowych.
• Chemiczna natura florigenu nie jest do
końca wyjaśniona, jednym z jego
składników może być białko kodowane przez gen FT (Flowering locus T).
Budowa kwiatu
• Merystem kwiatowy różnicuje w cztery
koncentryczne okółki (kręgi) komórek, które tworzą następnie cztery części kwiatu.
• Komórki w okółku 1 rozwijają się w
działki kielicha, tworzące najniższy poziom. Łącznie działki tworzą tzw. kielich.
• Okółek 2 daje początek
umieszczonym nad kielichem płatkom,
tworzącym razem koronę kwiatu. Korona kwiatu jest jego najbardziej barwną częścią.
• Okółek 3 rozwija się w pręciki, męskie
organy płciowe.
• Okółek 4 (najbardziej wewnętrzny)
tworzy słupki, narządy płciowe żeńskie. Często zlewają się w pojedynczą strukturę.
1 2
3 4
Model ABC rozwoju kwiatu
• Wyniki analizy genetycznej mutantów Arabidopsis i Petunii, sugerowały, że istnieje grupa genów kodujących czynniki transkrypcyjne (główne włączniki)
niezbędne do włączania genów
warunkujących rozwój działek kielicha, płatków korony, pręcików i słupków.
• Te główne włączniki należą do trzech klas: A, B i C.
• Komórki, w których wyrażane są tylko geny klasy A tworzą działki kielicha.
• Komórki, w których wyrażane są zarówno geny klasy A jak i klasy B, tworzą płatki korony.
• Komórki, w których wyrażane są zarówno geny klasy B jak i klasy C, tworzą pręciki. • Komórki, w których wyrażane są tylko geny
klasy C tworzą słupki.
Geny ABC:
Grupa A: Apetala1 (AP1) Apetala2 (AP2) Grupa B: Apetala3 (AP3)
Pistilata (PI)
Relacje między genami ABC
•
Geny klasy A i C są w stosunku
do siebie represorami. W
nieobecności A, C są aktywne w
całym kwiecie. W nieobecności C,
A są aktywne w całym kwiecie.
Geny klasy E (SEP) uzupełniają geny modelu ABC
•
Geny SEP (SEPALLATA), obok
genów ABC, są niezbędne do
prawidłowego określania
Większość genów ABCE koduje czynniki
transkrypcyjne z domeną MADS
• Domena MADS występuje na N-końcu białka i warunkuje: wiązanie do DNA,
zdolność do dimeryzacji i lokalizację jądrową.
• (tylko białko AP2 nie należy do rodziny białek MADS)
• Arabidopsis zawiera ponad 100 genów kodujących różne białka z domeną MADS.
Domena K
ANIMALS PLANTS
Pattern formation in development
Embryo development Flower development
Master regulatory genes contain Master regulatory genes
homeobox (Hox genes) contain MADS box
Dorsal-ventral specification controlled
by TGF-related proteins (GURKEN), No relatives of GURKEN
receptor tyrosine kinases, Ras No receptor tyrosine kinases
activation, transcription factors No Ras proteins
of kappa B, Rel, basic HLH families No kappa B or Rel –type TFs Weak similarity of the bHLH domain
Cell-cell signaling
Critical role of receptor tyrosine kinases, Critical role of serine/threonine
Ras activation kinases of the type not found in animals
Chromatin
Histones, histone modifying proteins, Swi/Snf-type ATPases, Trx proteins, Polycomb proteins, HP1-type proteins.
Enahncer of zeste (Polycomb-type CURLY LEAF (Polycomb type) maintains repression of maintains repression of the MADS
the Hox genes (Ultrabithorax) genes (AGAMOUS)
Niezależna ewolucja genetycznych narzędzi kontroli
rozwoju u zwierząt i roślin
Centralna rola genu LFY (LEAFY)
•
Ortologi LFY występują u wszystkich gatunków roślin (także nie
kwiatowych).
•
Aktywność LFY jest konieczna i wystarczająca do determinacji
merystemu kwiatowego.
•
Niezależnie od determinacji typu merystemu, LFY pełni dwie kluczowe
funkcje w rozwoju kwiatu:
1.
Jest głównym integratorem sygnałów prowadzących do indukcji
kwitnienia.
Cztery fazy rozwoju kwiatu
1.
W odpowiedzi na sygnały ze środowiska i sygnały wewnętrzne roślina
przestawia się z wzrostu wegetatywnego na wzrost reprodukcyjny – ten
proces kontrolują
geny regulujące czas kwitnienia
(flowering time
genes).
2.
Sygnały z różnych ścieżek wpływających na czas kwitnienia są
integrowane, co prowadzi do aktywacji niewielkiej grupy
genów
tożsamości merystemu
(meristem identity genes), które warunkują
powstanie kwiatu (Geny TFL1, LFY, AP1).
3.
Geny tożsamości merystemu aktywują
geny tożsamości organów
kwiatowych (Geny ABCE).
4.
Geny tożsamości organów aktywują zależne od nich
geny „budujące
organy”,
które determinują różne typy komórek, z których składają się
Genetyczna kontrola czasu kwitnienia
Geny kontrolujące czas kwitnienia działają w czterech ścieżkach indukcji:
A. Zależnej od fotoperiodu (rytm dobowy, długi dzień);
B. Zależnej od giberelin (GA); C. Autonomicznej; D. Wernalizacyjnej
A
B
C
D
Analiza czasu kwitnienia w Arabidopsis, efekt mutacji w genach SWI3
A
B
C
D
% % % %Sarnowski et al.,Plant Cell 2005
days leaf No C-24-25 /9-10 D-24-25 /11 Wt-20-21 /11 days leaf No C-65-75 /27 D-60-75 /34 Wt-58-67 /54 C-3-4 D-6-7 Wt-8 C-3-4 D-6-7 Wt-8
atswi3c: early flowering in SD, slightly early flowering in LD atswi3d: early flowering in SD
Kontrola czasu kwitnienia – fotoperiod (long day pathway)
• Wiele genów indukujących kwitnienie w długim dniu koduje białka zaangażowane w percepcję światła (PHYTOCHROME A,
CRYPTOCHROM2) lub składniki regulujące
zegar okołodobowy (GIGANTEA, ELF3). • Geny te ostatecznie aktywują gen CO
(CONSTANS) (mutany co są późnokwitnące, nadekspresja CO powoduje wczesne
kwitnienie).
• CO koduje białko jądrowe zawierające dwie domeny palców cynkowych.
Kontrola czasu kwitnienia – gibereliny
• Mutanty z defektem w biosyntezie giberelin (np.
ga1) są bardzo późno kwitnące w krótkim dniu,
ale nie w długim, co wskazuje, że szlak GA ma kluczowe znaczenie w indukcji kwitnienia w sytuacji braku sygnału indukującego długiego dnia (fotoperiodycznego)
Kontrola czasu kwitnienia – szlak autonomiczny
i szlak wernalizacyjny
• Geny szlaku autonomicznego kontrolują kwitnienie niezależne od długiego dnia
(Arabidopsis jest normalnie rośliną kwitnącą w długim dniu, ale po dłuższym okresie zakwita także w krótkim dniu). Kwitniecie w krótkim dniu jest indukowane przez geny szlaku autonomicznego.
• Geny szlaku wernalizacyjnego są związane z indukcją kwitnienia zależną od przejścia zimowego przechłodzenia.
• Geny FLC, SOC1, FT i LFY pełnią funkcję integratorów sygnałów z różnych szlaków kontroli czasu kwitnienia.
Ekspresja okołodobowa głównych elementów ścieżki związanej z fotoperiodem (długością dnia)
a. GI i CDF1 są kontrolowanymi przez zegar okołodobowy odpowiednio, pozytywnymi i negatywnymi regulatorami CO. FKF1 jest niezbędny do degradacji CDF1 w środku dnia, co bezpośrednio umożliwia wzrost ilości mRNA CO.
b. Profil ekspresji CO w krótkim i długim dniu jest inny. Dwu-fazowa krzywa występuje tylko w długim dniu.
c. Akumulacja białka CO silnie zależy od koincydencji światła i ekspresji mRNA. CO jest degradowane w ścieżce proteasomowej, ale w sposób zależny od receptorów światła i białek SPA.
d. Wytwarzanie mRNA FT jest bezpośrednim rezultatem akumulacji białka CO.
Sieć regulatorowa kontrolująca ekspresje mRNA genu CO I stabilność białka CO
Symbol zegara oznacza, że transkrypcja genu jest regulowana przez zegar okołodobowy
Zygzakowana strzałka oznacza, że białka jest fotoreceptorem
Regulacja transkrypcyjna
Regulacja
potranskrypcyjna Akumulacja białka CO
Koincydencja akumulacji mRNA CO i światła i pod koniec długiego dnia stabilizuje białko CO. Białko CO umożliwia następnie transkrypcję FT i TSF (Twin Sister of FT, bardzo podobne białko) w komórkach towarzyszących rurkom sitowym (floem), w odległej części liścia. Białko FT i prawdopodobnie TSF są ładowane do
elementów sitowych poprzez dyfuzje przez plazmodesmy albo inny niezidentyfikowany mechanizm aktywnego transportu.
Następuje długodystansowy transport FT poprzez floem wraz innymi metabolitami transportowanymi z liścia do tkaenk docelowych
W wyniku transportu FT i TSF akumulują się w merystemie wierzchołkowym pędu (SAM), gdzie prawdopodobnie wytwarzają gradient
FT i czynnik transkrypcyjny bZIP FD oddziałują i aktywują transkrypcję AP, który
rozpoczyna przekształcenie w merystem kwiatowy i hamuje ekspresję SOC1 (Suppressor of overexpresion of CO).
Białko FT stanowi sygnał systemiczny
TSF – Twin sister of FT
Dynamika ekspresji genów w merystemie wierzchołkowym pędu (SAM) w trakcie przejścia do fazy kwitnienia
Wegetatywny
Kwiatowy Indukcja
Czerwony – mRNA Niebieski - białko
SWI/SNF and control of flowering time
AP1 LFY SWI3C SWI3B BSH SWP 73BRM
Kompleks SWI/SNF pośredniczy w sygnalizacji uruchamianej przez gibereliny