ISSN 1427-4337
Received: 08.12.2016 / Accepted: 13.01.2017
The Polish Society of Plant Protection
The Institute of Plant Protection – National Research Institute
Evaluation of the nematicide fosthiazate (Nemathorin 10 G)
for the management of pin nematode Paratylenchus bukowinensis
Micoletzky, 1922 in crop of celery Apium graveolens L.
var. rapaceum (Mill.) Gaudin
Ocena możliwości zwalczania szpilecznika baldasznika Paratylenchus
bukowinensis Micoletzky, 1922 w uprawie selera Apium graveolens
L. var. rapaceum (Mill.) Gaudin przy użyciu fostiazatu (Nemathorin 10 G)
Aneta Chałańska*, Aleksandra Bogumił, Artur Miszczak, Katarzyna ZagibajłoSummary
During the growing season 2015–2016 the effectiveness of fosthiazate (Nemathorin 10 G) was evaluated in celery crops against pin nematode Paratylenchus bukowinensis. The analyses of soil revealed inefficiency of the tested nematicide in management of
P. bukowinensis. Yield differences between treated and untreated plots were not statistically significant. Fosthiazate residues were
detected in both soil and plant material samples throughout the growing season, and their levels in celery exceed the accepted limit of 0.02 mg/kg. In light acidic soil with low organic matter the content of fosthiazate residue was detected in roots 120 days after the product application.
Key words: celery; fosthiazate; Paratylenchus bukowinensis; residues
Streszczenie
W sezonach wegetacyjnych 2015–2016 przeprowadzono badania dotyczące możliwości zwalczania szpilecznika baldasznika
Paratylenchus bukowinensis w uprawie selera korzeniowego przy użyciu fostiazatu (Nemathorin 10 G). Na podstawie analiz gleby
stwierdzono brak skuteczności nematocydu w ograniczaniu liczebności P. bukowinensis. Plon selera na poletkach traktowanych i kontrolnych nie różnił się istotnie. Pozostałości fostiazatu wykrywane były zarówno w próbach gleby, jak i materiale roślinnym przez cały okres wegetacyjny, 120 dni od aplikacji poziom fostiazatu w korzeniach selera przekraczał wartości dopuszczalne (NDP – najwyższe dopuszczalne poziomy pozostałości pestycydów).
Słowa kluczowe: seler; fostiazat; Paratylenchus bukowinensis; pozostałości Instytut Ogrodnictwa
Konstytucji 3 Maja 1/3, 96-100 Skierniewice *corresponding author: aneta.chalanska@inhort.pl
Wstęp / Introduction
Szpilecznik baldasznik Paratylenchus bukowinensis Micoletzky, 1922 jest nicieniem często występującym w uprawie selera Apium graveolens L. var. rapaceum (Mill.) Gaudin, wykrywanym w ponad 80% prób gleby, pochodzących z tej uprawy (Chałańska i Bogumił 2016). Wskutek żerowania tego szkodnika na korzeniach pierwszego rzędu wyrastają liczne, krótkie korzenie bocz-ne, tworzące charakterystyczne kępki, na których z czasem pojawiają się nekrozy. W uprawie selera próg tolerancji szpilecznika baldasznika wynosi 50 osobników/100 cm3 gleby (Brzeski 1993). Powyżej 800 osobników/100 cm3 gleby obserwowany jest istotny spadek masy roślin i wiel-kości plonu (Brzeski 1975).
Liczba preparatów nicieniobójczych dopuszczonych do stosowania w Polsce jest niewielka. Zarejestrowane są dwa nematocydy: Vydate 10 G oraz Nemathorin 10 G, przy czym żaden z nich nie jest dopuszczony do stosowania w uprawie selera. Vydate 10 G jest środkiem działającym układowo, którego substancją czynną jest oksamyl. Środek przeznaczony jest do zwalczania owadów i nicieni w upra-wie ziemniaka Solanum tuberosum L., buraka cukrowego
Beta vulgaris L. subsp. vulgaris, marchwi Daucus carota
L. i truskawki Fragaria x ananassa Duchesne, bez określonego okresu karencji. Z kolei Nemathorin 10 G na bazie fostiazatu ma działanie kontaktowe i przeznaczony jest do zwalczania mątwika ziemniaczanego w uprawie ziemniaka. Zalecany okres karencji w przypadku tego pre-paratu wynosi 120 dni. Efektywność powyższych nema-tocydów była testowana w odniesieniu do różnych gatunków nicieni. Skuteczność Vydate 10 G potwierdzili Jagdale i Grewal (2002) w badaniach dotyczących zwalczania węgorków (Aphelenchoides spp.) oraz Khalil i wsp. (2012) w doświadczeniu szklarniowym, gdzie testo-wano preparaty przeciwko Meloidogyne incognita (Kofoid & White, 1919) Chitwood, 1949.W badaniach Kimpinski i wsp. (1997) oraz Sturz i Kimpinski (1999) zastosowanie środka Nemathorin 10 G w uprawie ziemniaka istotnie zredukowało liczebność populacji Pratylenchus penetrans (Cobb, 1917) Filipjev & Schuurmans Stekhoven, 1941. Z kolei Chabrier i wsp. (2002) po aplikacji tego preparatu, zaobserwowali ograniczenie występowania nicieni
Rado-pholus similis (Cobb, 1893) Thorne, 1949, a Saad i wsp.
(2012) potwierdzili efektywność fostiazatu także w odnie-sieniu do guzaków.
Dotychczas nie prowadzono badań nad możliwością ograniczania P. bukowinensis stosując powyżej omawiane substancje czynne w uprawie selera. Liczne zgłoszenia producentów świadczą o trudnościach w utrzymaniu populacji nicieni tego gatunku na poziomie poniżej progu szkodliwości jedynie przy użyciu metod agrotechnicznych. Taka sytuacja powoduje konieczność prowadzenia badań oraz włączenie niezagrażających zdrowiu i skutecznych metod ochrony chemicznej do integrowanej produkcji selera. Najprostszym rozwiązaniem tego problemu byłoby zastosowanie dostępnego na rynku krajowym nematocydu, którego skuteczność została potwierdzona w odniesieniu do innych gatunków nicieni – pasożytów roślin. W doś-wiadczeniu uwzględniono jeden z dostępnych na rynku krajowym nematocydów, Nemathorin 10 G.
Celem badań była ocena skuteczności fostiazatu w zwalczaniu P. bukowinensis w uprawie selera. Ze względu na brak informacji dotyczących pozostałości badanego nematocydu w tkankach roślin, dodatkowo oce-niono dynamikę zanikania fostiazatu w glebie i roślinach selera korzeniowego.
Materiały i metody / Materials and methods
Badania skuteczności preparatu Nemathorin 10 G w zwalczaniu P. bukowinensis przeprowadzono dwukrot-nie w warunkach polowych w latach 2015–2016. Doświad-czenia zakładano pod koniec maja na polu doświad-czalnym Instytutu Ogrodnictwa w Skierniewicach (gleba lekka – piasek gliniasty lekki o pH 5,9 i zawartości materii organicznej 2,9). Glebę zasiedlono szpilecznikiem baldasznikiem w roku poprzedzającym realizację prac badawczych. Poletka o powierzchni 10 m2 były regularnie nawadnianie przez cały okres wegetacyjny. Doświadczenia prowadzono w układzie losowym w czterech blokach po dwa obiekty (poletka traktowane środkiem Nemathorin 10 G oraz poletka kontrolne), po 10 roślin selera odmiany Albin w każdym powtórzeniu. Nematocyd Nemathorin 10 G aplikowano przed sadzeniem roślin w dawce zaleca-nej przez producenta, czyli 30 kg/ha. Na zakończenie doświadczenia (początek października) z poletek zebrano plon oraz pobrano próby do analiz. Z 250 ml prób gleby nicienie ekstrahowano zmodyfikowaną metodą Baermana (Luc i wsp. 2005). Liczebność szpileczników przed apli-kacją preparatu (PRE-T) oraz na zakończenie doświadcze-nia (zbiór) określono przy użyciu mikroskopu stereoskopo-wego (OPTA-TECH X2000).
Uzyskane wyniki poddano analizie wariancji (ANOVA), a różnice oceniono stosując wielokrotny test t-Duncana przy poziomie istotności α = 0,05. Na podstawie średniej liczby nicieni P. bukowinensis w glebie obliczono efek-tywność preparatu Nemathorin 10 G według wzoru Hendersona-Tiltona (Henderson i Tilton 1955).
Testy dotyczące dynamiki zanikania fostiazatu przepro-wadzono w 2016 roku, analizując odpowiednio pobrane próby gleby oraz materiału roślinnego. Początkowo gleba pobrana była przed aplikacją preparatu, a następnie analizy gleby i roślin prowadzono co 30 dni aż do zakończenia doświadczenia po upływie okresu karencji (120 dni). Do czasu wykonania analiz próbki przechowywano w tem-peraturze –18°C. Badania wykonano zgodnie z metodyką QUEChERS (Quick, Easy, Cheap, Effective, Rugged and Safe) opisaną przez Anastassiades i wsp. (2003) i normą PN-EN 15662 (2008). Analizy pozostałości fostiazatu wykonano techniką chromatografii cieczowej (Agilent Technologies 1200 Series z detektorem masowym Agilent Technologies 6410 Triple Quad LC-MS). W celu wyznaczenia selektywności metody oznaczania przepro-wadzono analizę roztworu wzorcowego przygotowanego z certyfikowanego wzorca analitycznego fostiazatu i okreś-lono jony (m/z) służące do ilościowego oznaczania i jakoś-ciowego potwierdzenia występowania tego analitu (284,1 m/z → 228,1 m/z, 284,1 m/z → 104,1 m/z) oraz czas retencji (RT): 10,60±0,1 min. Kalibracje przygo-towano przy użyciu roztworów fostiazatu w matrycy, co
zapewniało identyczność czasu retencji badanej substancji w próbkach kalibracyjnych i badanych.
Walidacja fostiazatu została wykonana w selerze i gle-bie zgodnie z wymaganiami zawartymi w dokumencie SANTE/11945/2015. Granica wykrywalności i oznaczal-ności dla fostiazatu w glebie wynosiła odpowiednio 0,0005 mg/kg i 0,001 mg/kg, a w selerze: 0,0025mg/kg i 0,01 mg/kg. Zakres roboczy metody dla fostiazatu w gle-bie wyznaczono w granicach od 0,001 do 10 mg/kg, a w selerze od 0,01 do 20 mg/kg. Współczynnik korelacji liniowej (r) wyniósł, odpowiednio 0,998 i 0,999 dla gleby i selera, co potwierdziło zależność liniową w badanym zakresie. Średni odzysk fostiazatu w glebie wyniósł 101,1%, a w selerze 102,3%. Niepewność złożoną ozna-czeń fostiazatu uc(y) ustalono na poziomie: 18,5% dla gleby i 10,1% dla selera.
Wyniki i dyskusja / Results and discussion
Na podstawie dwuletnich badań stwierdzono brak skuteczności preparatu Nemathorin 10 G w zwalczaniu szpilecznika baldasznika. Pomimo aplikacji nematocydu populacja P. bukowinensis istotnie zwiększyła się na koniec sezonu wegetacyjnego zarówno w roku 2015, jak i 2016. Zgodnie z kryteriami zawartymi w Rozporządzeniu Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 4 sierpnia 2004 r. (Rozporządzenie 2004) ograniczenie liczebności organizmu szkodliwego występuje przy skuteczności minimum 40%, stąd uzyskana efektywność preparatu (poniżej 7%) nie jest wynikiem zadawalającym (tab. 1).
W obu doświadczeniach zastosowanie fostiazatu nie wpłynęło również istotnie na wielkość plonu (tab. 2).
Doniesienia literaturowe wskazują na skuteczność środka Nemathorin 10 G w zwalczaniu różnych gatunków nicieni, zarówno tworzących cysty, jak i wolnożyjących. Efekt ograniczania populacji po aplikacji fostiazatu obserwowano m.in. w odniesieniu do mątwika agresyw-nego Globodera pallida Stone, 1973 (Woods i wsp. 1999), mątwika ziemniaczanego Globodera rostochiensis (Wollenweber, 1923) Skarbilovich, 1959 (Tobin i wsp. 2008) i korzeniaka szkodliwego (Pratylenchus penetrans) (Kimpinski i wsp. 1997; Zasada i wsp. 2010). Skuteczność tego nematocydu testowano w różnych uprawach, w tym w uprawie orzecha ziemnego Arachis hypogaea L. (Min-ton i wsp. 1993), ziemniaka (Sturz i Kimpinski 1999), bananowca Musa × paradisiaca L. (Chabrier i wsp. 2002) i pomidora Solanum lycopersicum L. (Giannakou i wsp. 2005; Saad i wsp. 2012). Nie przeprowadzono natomiast badań dotyczących możliwości zwalczania szpilecznika baldasznika w selerze. Pomimo doniesień innych autorów wskazujących na skuteczność fostiazatu w ograniczaniu liczebności nicieni – pasożytów roślin, substancja ta nie wykazała efektywności w ochronie uprawy selera korze-niowego przed P. bukowinensis.
Przed zastosowaniem preparatu Nemathorin 10 G w glebie wykryto śladowe pozostałości fostiazatu (tab. 3). Po 30 dniach od aplikacji nematocydu w glebie i roślinach stwierdzono bardzo wysokie stężenie badanej substancji czynnej, przy czym w roślinach było ono dwukrotnie wyż-sze niż w glebie. W trakcie sezonu wegetacyjnego zawartość fostiazatu w glebie i roślinach stopniowo Tabela 1. Ocena skuteczności preparatu Nemathorin 10 G w zwalczaniu szpilecznika baldasznika w uprawie selera korzeniowego Table 1. Efficacy of Nemathorin 10 G in management of pin nematode in celery crops
Rok Year
Liczebność szpilecznika baldasznika (Paratylenchus bukowinensis)*
Population of the pin nematode (Paratylenchus bukowinensis) Skuteczność** Effectiveness
[%]
PRE-T zbiór – harvest
Nemathorin 10 G kontrola − untreated Nemathorin 10 G kontrola − untreated
2015 140 a 308 a 2248 b 2852 b 0,0
2016 172 a 186 a 2929 ab 3393 b 6,8
Średnie oznaczone tą samą literą w wierszach nie różnią się istotnie przy poziomie istotności 5% według testu Duncana Means followed by the same letter in rows are not significantly different at 5% level according to Duncan’s test *badanie wykonano na próbce 250 ml gleby – analysis of 250 ml of soil sample
**skuteczność zabiegu według wzoru Hendersona-Tiltona na podstawie liczebności nicieni w glebie − efficacy of the treatment according to Henderson- -Tilton formula based on the population of nematodes in the soil
Tabela 2. Plon selera korzeniowego Table 2. Yield of the celery
Rok Year
Masa całej rośliny Total weight of the plant
[kg/m2] Masa liści Weight of leaves [kg/m2] Masa korzeni Weight of roots [kg/m2] Nemathorin
10 G untreated kontrola Nemathorin 10 G untreated kontrola Nemathorin 10 G untreated kontrola
2015 6,25 a 5,83 a 1,47 a 1,40 a 4,78 a 4,43 a
2016 3,13 a 2,53 a 1,16 a 0,99 a 1,97 a 1,54 a
Średnie oznaczone tą samą literą w wierszach nie różnią się istotnie przy poziomie istotności 5% według testu Duncana Means followed by the same letter in rows are not significantly different at 5% level according to Duncan’s test
Tabela 3. Poziom pozostałości fostiazatu w uprawie selera korzeniowego Table 3. Residue level of the fosthiazate in the celery crop
Termin – Date Fostiazat – Fosthiazate [mg/kg]
gleba – soil roślina – plant
PRE-T* 0,0011 –
T + 30 dni – days 6,605 15,878
T + 60 dni – days 1,046 7,505
T + 90 dni – days 0,492 7,28
T + 120 dni – days 0,215 2,94
*T – termin aplikacji preparatu, 31.05.2016 r. – date of application of the product, 31.05.2016 spadała, ale w dniu zbioru korzeni selera w glebie wykryto
ponad 0,2 mg/kg tej substancji, a w korzeniach selera pra-wie 3 mg/kg. Najwyższy dopuszczalny poziom pozosta-łości (NDP) fostiazatu w selerze wynosi 0,02 mg/kg (Rozporządzenie 2005), co świadczy o tym, że zawartość tego środka ochrony roślin znacząco przekraczała dopuszczalne stężenie w produktach roślinnych.
Badania dotyczące degradacji fostiazatu były już wcześniej prowadzone. Wyniki doświadczeń nad okreś-leniem szybkości rozkładu tej substancji czynnej opisał m.in. Giannakou i wsp. (2005), Osborn i wsp. (2008) oraz Wu i wsp. (2012). Wśród czynników mających wpływ na degradację fostiazatu wymieniane są pH gleby i zawartość materii organicznej (Pantelelis i wsp. 2006; Karpouzas i wsp. 2007). Pantelelis i wsp. (2006) wykazali, że w wa-runkach klimatu śródziemnomorskiego w glebach o odczy-nie zasadowym (pH > 7) czas połowicznego rozkładu fostiazatu jest prawie trzykrotnie krótszy niż w glebach o odczynie kwaśnym (pH < 6) i wynosi odpowiednio 14,1–20,7 oraz 53,3–57,7 dni. Jak opisuje Qin i wsp. (2004) szybszy rozkład badanej substancji czynnej zachodzi w glebie o wyższym pH, ale przy wysokiej zawartości materii organicznej. Nie bez znaczenia jest także skład mechaniczny gleby. W glebach ciężkich, o dużej zawartości iłu rozkład fostiazatu następuje szybciej (Qin i wsp. 2004; Karpouzas i wsp. 2007). W zależności od właściwości gleby czas połowicznego rozkładu może trwać od dwóch tygodni do prawie 100 dni w klimacie śródziemnomorskim na glebach lekkich (piasku glinias-tym) o pH 7,4 i zawartości materii organicznej 3,74 (Gian-nakou i wsp. 2005).
W prezentowanych badaniach prowadzonych na glebie lekkiej o odczynie kwaśnym i niskiej zawartości materii organicznej, fostiazat był obecny w wysokim stężeniu po okresie karencji (po 120 dniach). Istotny wpływ na wol-niejszą degradację tej substancji czynnej mogły mieć właściwości fizykochemiczne gleby, o czym świadczą dane literaturowe. Długi rozkład preparatu Nemathorin
10 G warunkuje wysoką skuteczność zwalczania nicieni w glebie (Giannakou i wsp. 2005). Jednakże uzyskane rezultaty przeprowadzonych doświadczeń wskazują, że pomimo długiego utrzymywania się wysokiego poziomu substancji czynnej w glebie, nie osiągnięto satysfakcjo-nujących wyników zwalczania nicieni z rodzaju
Paraty-lenchus.
Na podstawie dwuletnich wyników prac badawczych należy wykluczyć możliwość wykorzystania preparatu Nemathorin 10 G w ograniczaniu populacji P.
bukowi-nensis.
Wnioski / Conclusions
1. Preparat Nemathorin 10 G nie był efektywny w zwal-czaniu szpilecznika baldasznika w uprawie selera korzeniowego.
2. Zastosowanie fostiazatu nie wpłynęło istotnie na zwiększenie plonu selera korzeniowego.
3. Po upływie 120 dni od aplikacji preparatu Nemathorin 10 G w glebie lekkiej o odczynie kwaśnym i niskiej zawartości materii organicznej ilość fostiazatu w glebie przekraczała poziom 0,2 mg/kg.
4. Fostiazat nie może być polecany w uprawie selera do zwalczania szpilecznika baldasznika.
Podziękowanie / Acknowledgements
Praca została wykonana w ramach Programu Wieloletniego (2015–2020) „Działania na rzecz poprawy konkurencyjności i innowacyjności sektora ogrodniczego z uwzględnieniem jakości i bezpieczeństwa żywności oraz ochrony środowiska naturalnego”, zadanie 2.3 – „Analiza możliwości integrowanej ochrony wybranych roślin ogrodniczych dla upraw małoobszarowych”, finanso-wanego przez Ministerstwo Rolnictwa i Rozwoju Wsi.
Literatura / References
Anastassiades M., Lehotay S.J., Stajnbaher D., Schenck F.J. 2003. Fast and easy multiresidue method employing acetonitrile extraction/partitioning and dispersive solid-phase extraction for the determination of pesticide residues in produce. Journal of AOAC International 86 (2): 412–431.
Brzeski M.W. 1975. Szkodliwość węgorka selerkowca (Paratylenchus bukowinensis Micol.) dla selerów. Roczniki Nauk Rolniczych, Seria E, Ochrona Roślin 5 (1): 23–29.
Brzeski M.W. 1993. Nematologia rolnicza. Wydawnictwo SGGW, Warszawa, 87 ss.
Chabrier C., Hubervic J., Quénéhervé P. 2002. Evaluation of fosthiazate (Nemathorin® 10 G) for the control of nematodes in banana fields in Martinique. Nematropica 32 (2): 137–147.
Chałańska A., Bogumił A. 2016. Występowanie szpilecznika baldasznika (Paratylenchus bukowinensis Micoletzky, 1922) oraz korzeniaków (Pratylenchus spp. Filipjev, 1936) w uprawach selera (Apium graveolens L.). [Occurrence of pin nematode (Paratylenchus bukowinensis Micoletzky, 1922) and lesion nematodes (Pratylenchus spp. Filipjev, 1936) in celery crops (Apium
graveolens L.)]. Progress in Plant Protection/Postępy w Ochronie Roślin 56 (3): 366–371.
Giannakou I.O., Karpouzas D.G., Anastasiades I., Tsiropoulos N.G., Georgiadou A. 2005. Factors affecting the efficacy of non- -fumigant nematicides for controlling root-knot nematodes. Pest Management Science 61: 961–972.
Henderson C.F., Tilton E.W. 1955. Tests with acaricides against the brown wheat mite. Journal of Economic Entomology 48: 157–161. Jagdale G.B., Grewal P.S. 2002. Identification of alternatives for the management of foliar nematodes in floriculture. Pest Management
Science 58: 451–458.
Karpouzas D.G., Pantelelis I., Menkissoglu-Spiroudi U., Golia E., Tsiropoulos N. 2007. Leaching of the organophosphorus nematicide fosthiazate. Chemosphere 68: 1359–1364.
Khalil M.S.E.H., Allam A.F.G., Barakat A.S.T. 2012. Nematicidal activity of some biopesticides agents and microorganisms against root-knot nematode on tomato plants under greenhouse conditions. Journal of Plant Protection Research 52 (1): 47–52.
Kimpinski J., Arsenault W.J., Sanderson J.B. 1997. Fosthiazate for suppression of Pratylenchus penetrans in potato on Prince Edward Island. Supplement to the Journal of Nematology 29 (4S): 685–689.
Luc M., Sikora R.A., Bridge J. 2005. Plant parasitic nematodes in subtropical and tropical agriculture. CABI Bioscience, Egham, UK, 871 pp.
Minton N.A., Brenneman T.B., Bondari K., Harrison G.W. 1993. Activity of fosthiazate against Meloidogyne arenaria, Frankliniella spp. and Sclerotium rolfsii in peanut. Peanut Science 20: 66–70.
Osborn R.K., Edwards S.S., Wilcox A., Haydock P.P.J. 2008. Potential enhancement of degradation of the nematicides aldicarb, oxamyl and fosthiazate in UK agricultural soils through repeated applications. Pest Management Science 66: 253–261.
Pantelelis I., Karpouzas D.G., Menkissoglu-Spiroudi U., Tsiropoulos N. 2006. Influence of soil physicochemical and biological properties on the degradation and adsorption of the nematicide fothiazate. Journal of Agricultural and Food Chemistry 54 (18): 6783–6789.
PN-EN 15662: 2008. Żywność pochodzenia roślinnego – Oznaczanie pozostałości pestycydów metodą GC-MS i/lub LC-MS(/MS) po uprzedniej ekstrakcji i rozdziale acetonitrylem oraz oczyszczaniu metodą dyspersyjnej SPE – Metoda QuEChERS.
Qin S., Gan J., Liu W., Becker J.O. 2004. Degradation and adsorption of fosthiazate in soil. Journal of Agricultural and Food Chemistry 52 (20): 6239–6242.
Rozporządzenie 2004. Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 4 sierpnia 2004 r. w sprawie badań skuteczności działania środka ochrony roślin. Dz. U. Nr 183 Poz. 1890, 12716–12753.
Rozporządzenie 2005. Rozporządzenie (WE) nr 396/2005 Parlamentu Europejskiego i Rady z dnia 23 lutego 2005 r. w sprawie najwyższych dopuszczalnych poziomów pozostałości pestycydów w żywności i paszy pochodzenia roślinnego i zwierzęcego oraz na ich powierzchni, zmieniające Dyrektywę Rady 91/414/EWG. Dz. Urz. UE L 70/1 z późn. zm.
Saad A.F.S.A., Massoud M.A., Ibrahim H.S., Khalil M.S. 2012. Activity of Nemathorin, natural product and bioproducts against root- -knot nematodes on tomatoes. Archives of Phytopathology and Plant Protection 45 (8): 955–962.
SANTE/11945/2015. Analytical Quality Control and Method Validation Procedures for Pesticide Residues Analysis in Food and Feed. Sturz A.V., Kimpinski J. 1999. Effects of fosthiazate and aldicarb on populations of plant-growth-promoting bacteria, root-lesion
nematodes and bacteria-feeding nematodes in the root zone of potatoes. Plant Pathology 48: 26–32.
Tobin J.D., Haydock P.P.J., Hare M.C., Woods S.R., Crump D.H. 2008. Effect of the fungus Pochonia chlamydosporia and fosthiazate on the multiplication rate of potato cyst nematodes (Globodera pallida and G. rostochiensis) in potato crops grown under UK field conditions. Biological Control 46: 194–201.
Woods S.R., Haydock P.P., Edmunds C. 1999. Mode of action of fosthiazate used for the control of the potato cyst nematode Globodera
pallida. Annals of Applied Biology 135: 409–415.
Wu J., Wang K., Zhang H. 2012. Residues and dissipation dynamics of fosthiazate in tomato and soil. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology 89: 664–668.
Zasada I.A., Walters T.W., Pinkerton J.N. 2010. Post-plant nematicides for the control of root lesion nematode in red raspberry. HortTechnology 20 (5): 856–862.
