• Nie Znaleziono Wyników

Biologia molekularna

N/A
N/A
Protected

Academic year: 2022

Share "Biologia molekularna"

Copied!
5
0
0

Pełen tekst

(1)

Biologia molekularna

Karta opisu przedmiotu

Informacje podstawowe

Jednostka organizacyjna Wydział Farmaceutyczny Kierunek studiów Analityka Medyczna Poziom kształcenia jednolite magisterskie Forma studiów stacjonarne Profil studiów praktyczny Dyscypliny

Nauki farmaceutyczne

Cykl dydaktyczny 2020/21

Rok realizacji 2021/22

Języki wykładowe Polski

Blok zajęciowy

obowiązkowy do zaliczenia w toku studiów Obligatoryjność

obowiązkowy

Forma weryfikacji uzyskanych efektów uczenia się egzamin

Grupa zajęć standardu

E. Naukowe aspekty medycyny laboratoryjnej

Koordynator przedmiotu

Małgorzata Knapik-Czajka

Prowadzący zajęcia Małgorzata Knapik-Czajka, Jagoda Drąg, Anna Gawędzka, Justyna Bieleń, Małgorzata Belczyk

Okres Semestr 3

Forma weryfikacji uzyskanych efektów uczenia się egzamin

Forma prowadzenia i godziny zajęć

seminarium: 18, ćwiczenia: 48, wykład: 5, wykłady e-learning: 9

Liczba

punktów ECTS 5.0

Cele kształcenia dla przedmiotu

C1 Nabycie przez studenta wiedzy na temat budowy i organizacji genomu ludzkiego, molekularnych mechanizmów ekspresji genów ze szczególnym uwzględnieniem regulacji tych procesów, a także podstawowych aspektów technologii rekombinowanego DNA.

C2 Opanowanie umiejętności w zakresie analizy materiału biologicznego z wykorzystaniem podstawowych technik biologii molekularnej.

(2)

Efekty uczenia się dla przedmiotu

Kod Efekty w zakresie Kierunkowe efekty

uczenia się Metody weryfikacji Wiedzy – Student zna i rozumie:

W1

funkcje genomu, transkryptomu i proteomu człowieka oraz procesy replikacji, naprawy i rekombinacji kwasu deoksyrybonukleinowego (DNA), transkrypcji i translacji oraz degradacji DNA, kwasu

rybonukleinowego (RNA) i białek

E.W6 egzamin pisemny

W2

mechanizmy regulacji ekspresji genów, aspekty transdukcji sygnału, aspekty regulacji procesów wewnątrzkomórkowych oraz problematykę rekombinacji i klonowania DNA

E.W7 egzamin pisemny

W3

zasady i zastosowanie technik biologii molekularnej oraz technik cytogenetyki klasycznej i cytogenetyki

molekularnej E.W8 egzamin pisemny

Umiejętności – Student potrafi:

U1

posługiwać się technikami biologii molekularnej oraz technikami cytogenetyki klasycznej i molekularnej w badaniach laboratoryjnych, a także zinterpretować uzyskane wyniki

E.U12 obserwacja pracy

studenta, sprawdzian praktyczny

Kompetencji społecznych – Student jest gotów do:

K1 formułowania wniosków z własnych pomiarów lub

obserwacji O.K7 sprawozdanie z

wykonania zadania

Bilans punktów ECTS

Rodzaje zajęć studenta Średnia liczba godzin* przeznaczonych na zrealizowane rodzaje zajęć

seminarium 18

ćwiczenia 48

przygotowanie do egzaminu 40

przygotowanie do ćwiczeń 20

wykład 5

przygotowanie do zajęć 10

wykłady e-learning 9

Łączny nakład pracy studenta Liczba godzin

150

Liczba godzin kontaktowych Liczba godzin

80

(3)

Nakład pracy związany z zajęciami o charakterze

praktycznym Liczba godzin

48

* godzina (lekcyjna) oznacza 45 minut

Treści programowe

Lp. Treści programowe Efekty uczenia się dla

przedmiotu Formy prowadzenia zajęć

1.

• Pojęcie genomu, transkryptomu, proteomu.

• Budowa i organizacja genomu Eukaryota i Prokaryota.

• Atruktura i funkcja genów, molekularne mechanizmy ekspresji genów ze szczególnym uwzględnieniem regulacji tych procesów.

• Mechanizmy molekularne mutagenezy.

• Podstawowe aspekty technologii rekombinowanego DNA oraz przykłady jej wykorzystania w naukach medycznych.

W1, W2 wykład, wykłady e-

learning

2.

Ćwiczenia:

• Zasady pracy w laboratorium biologii molekularnej.

• Izolacja DNA i RNA z materiału biologicznego.

• Analiza poziomu określonego mRNA i białka przy zastosowaniu odpowiednio techniki RT-PCR oraz Western blot.

• Transformacja komórek bakteryjnych zrekombinowanym DNA.

• Wykorzystanie enzymów restrykcyjnych w analizie DNA.

• Przedstawienie wybranych baz danych użytecznych w analizie ekspresji genów.

U1, K1 ćwiczenia

3.

Seminaria:

• Podstawowe aspekty zróżnicowania genetycznego.

• Mechanizmy naprawy DNA.

• Nowoczesne techniki biologii molekularnej- wprowadzenie.

• Zastosowania technik biologii molekularnej w diagnostyce różnych chorób (przykłady).

W3, K1 seminarium

Informacje rozszerzone

Metody nauczania:

Analiza tekstów, Ćwiczenia laboratoryjne, Dyskusja, E-learning, Seminarium, Wykład, Wykład z prezentacją multimedialną

Rodzaj zajęć Formy zaliczenia Warunki zaliczenia przedmiotu

seminarium egzamin pisemny, obserwacja pracy studenta

zdanie końcowego egzaminu pisemnego obejmującego testy: wielokrotnego wyboru; uzupełniania odpowiedzi, dopasowania, wyboru T/N; skala ocen: 60%- 67 % dostateczny (3) 68%- 75 % dostateczny plus (3+) 76%- 83% dobry (4) 84%- 91% dobry plus (4+) > 92% bardzo dobry (5)

ćwiczenia

obserwacja pracy studenta, sprawdzian praktyczny,

sprawozdanie z wykonania uzyskanie zaliczenia z ćwiczeń, (ocena min. 3.0), w tym poprawne wykonanie zadania praktycznego

(4)

Rodzaj zajęć Formy zaliczenia Warunki zaliczenia przedmiotu

wykład egzamin pisemny

zdanie końcowego egzaminu pisemnego obejmującego testy: wielokrotnego wyboru; uzupełniania odpowiedzi, dopasowania, wyboru T/N; skala ocen: 60%- 67 % dostateczny (3) 68%- 75 % dostateczny plus (3+) 76%- 83% dobry (4) 84%- 91% dobry plus (4+) > 92% bardzo dobry (5)

wykłady e-learning

Dodatkowy opis

Ocena końcowa z przedmiotu ustalana jest na podstawie średniej ważonej z uzyskanych przez Studenta ocen z egzaminu testowego i ćwiczeń.

Waga uzyskanych ocen stosowana do obliczania oceny końcowej z przedmiotu:

- egzamin pisemny: 6 - ocena z ćwiczeń: 4 3.0-3.4 - dostateczny (3) 3.5-3.8 - dostateczny plus (3+) 3.9-4.2 - dobry (4)

4.3-4.6 - dobry plus (4+) 4.7-5.0 - bardzo dobry (5)

Szczegółowe, obowiązujące warunki zaliczenia ćwiczeń i seminariów są opisane w regulaminie przedmiotu dostępnym na stronie Zakładu Analityki Biochemicznej.

Wymagania wstępne i dodatkowe

Znajomość zagadnień z zakresu: budowy komórki pro- i eukariotycznej; struktury i właściwości kwasów nukleinowych i białek, podstaw genetyki ogólnej i mechanizmów dziedziczenia, cyklu komórkowego.

Literatura

Obowiązkowa

Brown TA. Genomy. PWN, 2019 1.

Bal J. red. Biologia molekularna w medycynie. PWN, 2013.

2.

Lewandowska Ronnegren A. Techniki laboratoryjne w biologii molekularnej. MedPharm Polska, 2018.

3.

Dodatkowa

Słomski R. Analiza DNA. Praktyka, 2014 1.

Wybrane pozycje piśmiennictwa podawane przez prowadzących 2.

(5)

Standard kształcenia - efekty uczenia się

Kod Treść

E.U12 posługiwać się technikami biologii molekularnej oraz technikami cytogenetyki klasycznej i molekularnej w badaniach laboratoryjnych, a także zinterpretować uzyskane wyniki

E.W6 funkcje genomu, transkryptomu i proteomu człowieka oraz procesy replikacji, naprawy i rekombinacji kwasu deoksyrybonukleinowego (DNA), transkrypcji i translacji oraz degradacji DNA, kwasu rybonukleinowego (RNA) i białek

E.W7 mechanizmy regulacji ekspresji genów, aspekty transdukcji sygnału, aspekty regulacji procesów wewnątrzkomórkowych oraz problematykę rekombinacji i klonowania DNA

E.W8 zasady i zastosowanie technik biologii molekularnej oraz technik cytogenetyki klasycznej i cytogenetyki molekularnej

O.K7 formułowania wniosków z własnych pomiarów lub obserwacji

Cytaty

Powiązane dokumenty

Oreksyna A działając na adipocyty (i) stymuluje transport glukozy, (ii) zwiększa jej konwersję do kwasów tłuszczowych, (iii) hamuje lipolizę, (iv) promuje odkładanie

Podaj, ile różnych klas gamet mogą produkować rodzice, ile różnych genotypów i fenotypów można otrzymać w potomstwie oraz jaką część potomstwa stanowią samice o fenotypie

 Drożdże są wygodnym narzędziem badania interakcji genetycznych – SLS (ang. synthetic lethal screen) oraz fizycznych: białko-białko (system dwuhybrydowy), białko-DNA

Kształtowanie relacji z klientami i budowanie lojalności klientów to nie­ kończąca się praca.. Wraz ze zmianą rynku zmienia się również konsument, jego

The Eco-Runner Team is a ‘D:DREAM Team’ where students from various faculties work together to design and build extremely efficient, hydrogen powered vehicles and conduct research

Moreover, to facilitate waste generators with respect to disposal and reduce illegal dumping, MCD has also earmarked about 168 collection points for C&D waste in and

Cross sections used in nodal codes for 3-D core simulations are generally obtained by energy collapsing and spatial homogenization from single-assembly calculations with

W tym celu porównaliśmy jego poziom (z danych ChAP-seq dla linii 5D) dla TSS, TTS i ciała genu w różnych zestawieniach genów. 18B widać, że geny hipoaktywne w arp6 mają