Immobilizacja drożdży

ĆWICZENIE 3

Immobilizacja drożdży

Prowadzący: mgr inż. Michał Jadwiński

mgr inż. Przemysław Hahn

CEL ĆWICZENIA

Celem ćwiczenia jest immobilizacja drożdży piekarskich w alginianie wapnia metodą sieciowania.

PODSTAWY TEORETYCZNE

Enzymy są biokatalizatorami, które charakteryzuje:

wysoka specyficzność działania

kierunkowość działania

zdolność do obniżania w istotny sposób energii aktywacji reakcji chemicznych. Dzięki temu znalazły szerokie zastosowanie w wielu gałęziach przemysłu spożywczego, farmaceutycznego, kosmetycznego, chemicznego i w analityce medycznej. Często jednak stosowanie enzymów w formie natywnej wiąże sie z wysokimi kosztami prowadzenia procesów, szczególnie wtedy gdy konieczne jest stosowanie preparatu enzymatycznego o wysokim stopniu oczyszczenia, jak np. w farmacji, a także wówczas gdy proces prowadzony jest cyklicznie. Dlatego od lat 60-tych XX wieku coraz większym zainteresowaniem cieszą się enzymy immobilizowane.

Immobilizacją, czyli inaczej unieruchomieniem (łac. Immobilia – nieruchomy), można określić zespół metod, które ograniczają całkowicie lub częściowo swobodę poruszania się określonych atomów, cząsteczek, substancji lub materiału biologicznego (enzymów, mikroorganizmów) na podłożu stałym czy też wewnątrz specyficznych struktur.

Obecnie jest kilka klasyfikacji metod unieruchamiania. Najpopularniejsza z nich wyróżnia:

- unieruchamianie na powierzchni nośnika, - unieruchamianie wewnątrz nośnika, - unieruchamianie bez nośnika.

Unieruchamianie na powierzchni

Unieruchamianie na powierzchni nośnika występuje, gdy komórki wykazują naturalną skłonność przylegania do pewnych powierzchni lub innych organizmów, ewentualnie czynią to po zastosowaniu odpowiedniego chemicznego czynnika wiążącego (Tabela 1).

Adsorpcja na powierzchni Wiązanie kowalencyjne Wiązania elektrostatyczne

Tabela 1

W obrębie tej grupy metod wyróżnia się adsorpcję, adhezję i wiązanie kowalencyjne komórek. Ważne jest wysokie powinowactwo komórek do nośnika zapobiegające nadmiernym stratom populacji, szczególnie podczas szybkiego przepływu strumienia substratu w bioreaktorze.

Adsorpcja i adhezja polegają na unieruchamianiu komórek na powierzchni poprzez wiązania wodorowe, oddziaływania sił van der Waalsa, jonowe, hydrofobowe, elektrostatyczne, powinowactwa lub kombinacje różnych sił. Taki sposób immobilizacji jest bardzo prosty i tani, jednak ma podstawowe wady – stosunkowo niskie stężenie biomasy na jednostkę objętości bioreaktora oraz skłonność do desorpcji komórek w wyniku zmian pH, stężenia jonowego i innych czynników. Jako nośników używa się różnych materiałów: drewna, celulozy, jonitów, polimerów syntetycznych, szkła porowatego, spieków ceramicznych, tlenków metali, ziemi okrzemkowej i innych. Z kolei wiązanie kowalencyjne polega na utworzeniu chemicznych wiązań peptydowych, estrowych lub innych między nośnikiem i grupami funkcyjnymi zewnętrznej ściany komórkowej drobnoustroju. Jako czynnik wiążący stosuje się aldehyd glutarowy, natomiast nośnikami są różne materiały (szkło, ceramika, karboksymetyloceluloza, akrylany i inne).W przypadku unieruchamiania organizmów, takich jak drożdże Saccharomyces cerevisiae, kluczową rolę w wiązaniu odgrywają oddziaływania jonowe między nośnikiem o dużej gęstości ładunków dodatnich, a licznymi ujemnymi ładunkami na ścianie komórkowej drożdży. Aby zwiększyć zdolność unieruchamiania, sugeruje się zredukowanie siły elektrostatycznego odpychania komórka-nośnik. Ewentualnie dąży się do nadania powierzchni komórki lub nośnika ładunku dodatniego, przez zastosowanie np. polietylenoiminy (PEI) lub aldehydu glutarowego. Modyfikacja nośnika musi być jednak indywidualnie dobierana do unieruchamianych organizmów, ponieważ dodatek czynników aktywnych może powodować redukcję żywotności komórek lub na przykład obniżenie ilości otrzymywanego etanolu. Wiązanie drożdży można zwiększyć także w wyniku dehydratacji powierzchni komórkowej. Dehydratacja może być wynikiem suszenia konwekcyjnego lub liofilizacji, co jest związane z niszczeniem fragmentów struktury komórkowej. Następuje zwiększenie przepuszczalności błon komórkowych i 10-30%

składników wewnątrzkomórkowych przedostaje się do otaczającego podłoża, wchodząc w interakcje z powierzchnią nośnika. W zależności od rodzaju użytego nośnika ilość unieruchomionych komórek jest różna, co wskazuje że immobilizacja zależy od struktury chemicznej nośnika. Natomiast wydajność adsorpcji drobnoustrojów zależy od ich rodzaju, metabolizmu i wieku oraz cech środowiska. Sposób unieruchamiania jest bardzo prosty i polega na tym, że do roztworu z namnożonym materiałem biologicznym wprowadza się nośnik i pozostawia na pewien czas, bez mieszania lub z mieszaniem, w celu osadzenia się komórek. W drugim sposobie bioreaktor wypełnia się nośnikiem i wtłacza od góry lub od dołu, namnożone na podłożu płynnym komórki.

Unieruchamianie wewnątrz nośnika

Drugi rodzaj immobilizacji polega na „zamykaniu” komórek w materiałach włóknistych lub porowatych. W metodzie tej wyróżnia się pułapkowanie oraz zamykanie wewnątrz membran półprzepuszczalnych (Tabela 2).

Pułapkowanie Mikrokapsułkowanie Unieruchamianie wewnątrz membran

Tabela 2

Pułapkowanie (inkluzja) to unieruchamianie w matrycy żelu, która najczęściej jest w kształcie kuleczki o średnicy 0.3-3 mm, ale może być w formie sferycznej czy dysków.

Najpowszechniej stosowany nośnik to: alginian, poza tym stosuje się kappa-karagenian, chitozan, agar, pektynę, żywice epoksydowe, poliakryloamid.

Alginian jest kopolimerem kwasu ß-D-mannurowego i α-L-guluronowego, uzyskanym metodą ekstrakcji z brązowych alg Phaeophyceae. W obecności kationów dwuwartościowych (jak Ca²⁺) kwas alginianowy tworzy porowaty żel, idealny do kolonizacji i uzyskania dużego stężenia biomasy w nośniku. Matrycę polimeru uzyskuje się przez żelowanie w łagodnych warunkach, co umożliwia zamknięcie komórek z minimalną utratą ich aktywności.

Najpowszechniej stosowana technika to zawieszanie komórek w alginianie sodu i wkraplanie tej mieszaniny do roztworu chlorku wapnia. W ten sposób otrzymuje się porowate kulki z uwięzionym biokatalizatorem, biomasą mikroorganizmów lub białkiem enzymatycznym (rys.1)

rys. 1

Zamykanie komórek w żelach nie eliminuje ich ucieczki do fermentowanego podłoża, ponadto, w przypadku drożdży, zachodzi pękanie kuleczek pod wpływem powstającego podczas fermentacji CO2. W celu ograniczenia tego zjawiska prowadzono m.in. badania nad

utwardzaniem kuleczek alginianu wapnia polietylenoiminą i aldehydem glutarowym, karagenianu chlorkiem potasu, a kuleczek żelatyny utlenioną skrobią.

W immobilizacji wewnątrz nośnika wykorzystuje się również półprzepuszczalne membrany, przez które dyfundują małocząsteczkowe produkty i substraty, natomiast niemożliwa jest migracja cząsteczek biokatalizatora. Biokatalizatory albo zamyka się we wnętrzu kapsułki, która imituje naturalne błony biologiczne, wówczas mówimy o mikrokapsułkowaniu, albo biokatalizator jest oddzielony od środowiska przegrodą membranową w postaci płaskiej „foli” lub w postaci kapilary. W przypadku mikrokapsułkowania stosuje się membrany nylonowe, silikonowe, liposomowe, a także wytwarzane z pochodnych celulozy, a przegrody membranowe otrzymuje się na bazie polimerów, takich jak polichlorek winylu czy polipropylen. Ten sposób unieruchamiania jest jednak rzadko stosowany w przypadku żywych komórek, częściej zamykane są enzymy.

Unieruchamianie bez pomocy nośnika

W obrębie tej grupy metod wyróżnia się następujące sposoby:

– sieciowanie przestrzenne,

– flokulacja komórek przy udziale elektrolitów,

– naturalna flokulacja (samoagregacja) oraz wzrost drobnoustrojów w postaci kuleczek lub kłaczków biomasy.

Sieciowanie polega na wiązaniu ze sobą komórek drobnoustroju różnymi reagentami, zdolnymi do reakcji z grupami funkcyjnymi ich ściany komórkowej. Czynnikami sieciującymi mogą być aldehyd glutarowy, chlorek cyjanurowy lub heksametylenocyjaniany.

Wzajemne sieciowanie jest techniką łatwą i tanią. Daje zazwyczaj dość trwały biomateriał, jednak może prowadzić także do częściowej utraty aktywności i utrudniać dyfuzję substratów.

Metoda ta jest zalecana raczej do procesów z użyciem substratów małocząsteczkowych.

Flokulacja definiowana jest jako zdolność komórek będących w zawieszeniu do tworzenia większych skupień i konglomeratów w postaci kłaczków, które ulegają szybkiej sedymentacji. Procesy flokulacji pozwalają utrzymać wysoką gęstość populacji drobnoustrojów w bioreaktorze, bez stosowania nośników i innych materiałów.

Przyspieszenie procesu samoagregacji można spowodować poprzez regulację pH, skład pożywki, stężenie rozpuszczonego tlenu i inne czynniki (np. dodatek polielektrolitów).

Cechy nośników stosowanych do immobilizacji

W metodach immobilizacji ważny jest właściwy dobór nośnika i techniki immobilizacji, ponieważ decydują one o aktywności unieruchomionego biokatalizatora oraz wydajności procesu technologicznego. Uważa się, że dobry nośnik powinien wykazywać następujące cechy:

- obojętność w stosunku do zatrzymywanych mikroorganizmów, - prostota i łagodność unieruchamiania,

- duża zdolność zatrzymywania komórek, - wysoka mechaniczna stabilność,

- obojętność chemiczna,

- duża zdolność dyfuzyjna w stosunku do substratu i produktu, - możliwość regeneracji i kilkakrotnego użycia,

- łatwa dostępność, niski koszt,

- możliwość zastosowania w skali przemysłowej.

Zalety i wady immobilizacji

Zastosowanie komórek immobilizowanych stwarza korzyści technologiczne oraz ekonomiczne w porównaniu z tradycyjnymi procesami wykorzystującymi komórki wolne. Do korzyści tych można zaliczyć:

- wydłużenie aktywności i stabilności biokatalizatora, ponieważ nośnik może działać ochronnie w przypadku zmian pH, temperatury i składu podłoża,

- zwiększenie gęstości komórek w przeliczeniu na jednostkę objętości fermentora, co prowadzi do wyższej produktywności, skrócenia czasu fermentacji oraz eliminacji fazy namnażania się komórek,

- lepsze wykorzystanie substratu, w związku z czym proces przebiega z wyższą wydajnością,

- możliwość prowadzenia procesów ciągłych,

- ograniczenie występowanie zakażeń mikrobiologicznych,

- obniżenie pracochłonności i kosztów procesu, ponieważ biokatalizator wykorzystywany jest przez długi okres czasu.

Jednak w przypadku stosowania komórek immobilizowanych, obok zalet pojawiają się pewne problemy, które nie występują w układach z komórkami wolnymi. Do wad zaliczyć można:

- zmiany metaboliczne wywołane unieruchomieniem i długotrwałym wykorzystaniem tych samych komórek,

- problemy ze skuteczną dyfuzją substratów i produktów, - problemy z długotrwałą stabilnością nośnika,

- wymywanie komórek z nośnika.

Stąd cały czas prowadzone są badania nad doborem do różnych procesów technologicznych zarówno metod immobilizacji, jak i nośników.

Zastosowanie drobnoustrojów immobilizowanych

Od wielu lat trwają prace nad możliwością szerszego wykorzystania komórek unieruchomionych w procesach technologicznych. Duży wzrost zainteresowania aplikacją takich systemów w różnych procesach biotechnologicznych, głównie w przemyśle spożywczym, wynika z korzyści, jakie można osiągnąć z użycia immobilizowanej biomasy.

Największe szanse przemysłowego wykorzystania istnieją w procesach biosyntezy witamin, aminokwasów i kwasów organicznych, a szczególnie fermentacji etanolowej (Tabela 3).

Preparaty komórek drobnoustrojów immobilizowanych są droższe od podobnych preparatów komórek wolnych, dlatego też po zakończonym procesie należy odzyskać biomasę i przygotować do ponownego użycia. Z tej przyczyny do stosowania im mobilizowanych kultur drobnoustrojów przemysłowych nadają się tylko płyny o odpowiedniej konsystencji i klarowności. Warunki te spełniają wszystkie roztwory fermentacyjne – brzeczka piwna, nastawy winiarskie, brzeczki miodowe, klarowane zaciery gorzelnicze oraz inne media i podłoża płynne stosowane w procesach biosyntezy i biotransformacji.

Kultura mikroorganizmów Rodzaje nośnika Produkt Saccharomyces cerevisiae materiał ceramiczny, drewno,

żelatyna etanol

Saccharomyces cerevisiae alginian, karagen lub

poliakrylamid etanol

Saccharomyces cerevisiae żywice jonowymienne etanol Zymomonas mobilis alginian, włókno drewniane etanol Saccharomyces bayanus

alginian, żelatyna sieciowana, karagen, wióry

dębowe

wino

Saccharomyces uvarum

alginian wapnia, ziemia okrzemkowa, DEAE - celuloza

Piwo

Escherichia coli karagen, poliakrylamid kwas asparaginowy

Bravibacterium flavum kolagen kwas glutaminowy

Propionibacterium acidi-

propionici włókno bawełny kwas propionowy

Gluconobacter oxydans karagen, wióry bukowe,

szkło porowate kwas octowy

Corynebacterium

glutamicum alkohol poliwinylowy lizyna

Clostridium

thermosaccharolyticum kulki szkła porowatego etanol

Bacillus amyloliquefaciens alginian α-amylaza

Drożdże rekombinowane alginia, agaroza Bakterie kwasu mlekowego alginian, żele

polisacharydowe, karagen jogurt Bakterie kwasu mlekowego –

szczepy odkwaszające alginian, drewno biologiczne odkwaszanie moszczów i win

WYKONANIE ĆWICZENIA

Sprzęt:

mieszadło magnetyczne,

waga analityczna,

kolby stożkowe o poj. 100ml, rozdzielacz o poj 100ml,

cylindry o poj. 10ml,

zlewki o poj. 250 ml,

kolba stożkowa z tubusem bocznym o poj. 250ml,

lejek Buchnera

Materiał i odczynniki:

alginian sodu,

2,5% roztwór chlorku wapnia,

nasycony roztwór chlorku sodu,

2% roztwór sacharozy.

Procedura:

W kolbce o pojemności 100 ml umieścić 40 ml wody destylowanej, dodać 0,8 g alginianu sodu i mieszać do całkowitego rozpuszczenia. Do uzyskanego roztworu dodać 10 g drożdży piekarskich i mieszać do uzyskania jednorodnej zawiesiny.

Z uzyskanej zawiesiny przenieść 8 ml do rozdzielacza i wkraplać do 100 ml 2,5% roztworu chlorku wapnia umieszczonego w zlewce o pojemności 250 ml. Należy uzyskać złoże w postaci kulek. Immobilizowane drożdże kondycjonować (sieciować) w zlewkach z roztworem chlorku wapnia przez 15 minut (licząc od ostatniej utworzonej kulki). Po tym czasie odsączyć złoże kulkowe na lejku Buchnera i przemyć kilkakrotnie wodą destylowaną. Tak

przygotowany preparat przechowywać w wodzie destylowanej. Rozdzielacz przemyć wodą destylowaną, a następnie acetonem.

Porównanie aktywności preparatu drożdży immobilizowanych i drożdży świeżych w reakcji z sacharozą.

Przygotować dwie kolbki fermentacyjne o pojemności 100 ml z odprowadzeniem gazu do wyskalowanego cylindra umieszczonego w nasyconym roztworze NaCl. Umieścić w nich 100 ml 2% roztworu sacharozy. Do pierwszej kolbki dodać preparat drożdży immobilizowanych (przygotowany z 8 ml zawiesiny) , a do drugiej wprowadzić 2 g świeżych drożdży. Pod wpływem enzymów zawartych w drożdżach zachodzi hydroliza sacharozy do glukozy i fruktozy (inwertaza), a następnie fermentacja alkoholowa (zymaza). Postęp reakcji śledzić obserwując objętość wydzielonego dwutlenku węgla. Po 2,5 h zakończyć reakcje, odsączyć preparat immobilizowany, przemyć go wodą destylowaną i użyć ponownie w kolejnym eksperymencie ze 100 ml 2% roztworu sacharozy.

Opracowanie wyników.

Uzyskane wyniki zebrać w tabeli:

Objętość CO2 [ml]

Czas [min]

Drożdże świeże Drożdże immobilizowane I

Drożdże immobilizowane II