• Nie Znaleziono Wyników

Wpływ flawonoidów na stan zapalny w mózgu

W dokumencie [2017/Nr 3] Nr 3/2017 (pełna wersja) (Stron 49-53)

Istnieje coraz więcej dowodów na to, że flawo­

noidy i dieta bogata w te związki mogą opóźniać powstawanie i rozwój stanu zapalnego w mózgu.

Proces ten jest istotnym czynnikiem neurodegene­

racji, niestety obrona przed jego skutkami w mózgu

jest mało skuteczna. Reakcje zapalne prowadzą do zwiększonego stężenia cytokin i innych biomar­

kerów prozapalnych, co skutkuje postępującym uszkodzeniem neuronów [9–11, 26, 41].

Stan zapalny i towarzyszący mu stres oksydacyj­

ny zaburzają prawidłowe funkcjonowanie neuro­

nów mózgu, utrudniają skuteczność długotrwałego wzmocnienia wymaganego dla powstawania nowej pamięci oraz nasilają odkładanie złogów β­amyloidu i α­synukleiny, co prowadzi do dysfunkcji neuro­

nów i ich śmierci (np. choroba Alzheimera, Parkin­

sona i inne). Również podwyższony poziom czynni­

ka martwicy nowotworu (TNF­α) i innych cytokin przez zdolność do wzmacniania procesów zapalnych sprzyja neurodegeneracji.

Wiadomo, że obecne w składnikach codziennej diety flawonoidy mogą działać neuroprotekcyjnie przez hamowanie aktywacji mikrogleju, który po­

średniczy w procesach zapalnych w OUN. W licz­

nych badaniach wykazano, że główne właściwości przeciwzapalne flawonoidów polegają na hamo­

waniu:

­ aktywności oksydazy NAD(P)H i wytwarzania RFT w aktywowanych komórkach gleju;

­ ekspresji indukowalnej syntazy tlenku azotu (iNOS) i produkcji NO w odpowiedzi na akty­

wacje gleju;

­ uwalniania cytokin, takich jak: interleukiny (IL)­1β i TNF­α z aktywowanych komórek gle­

jowych oraz

­ regulacji aktywacji prozapalnych czynników transkrypcyjnych, takie jak: NFκB i ich wpływ na mikroglej i neuronalne szlaki sygnalizacyj­

ne [26].

Wszystkie te mechanizmy sprawiają, że wiele flawonoidów powszechnie występujących w owo­

cach (jabłka, jagody, pomarańcze i inne) dzięki właściwościom antyoksydacyjnym i zdolności do modulacji szklaków sygnałizacyjnych, w których zaangażowane sa kinazy MAP, PKA, PKC, PI3K/

PKB/Akt i inne mogą skutecznie chronić in vivo neurony przed uszkodzeniami oksydacyjnymi [2, 9–11, 26].

Doświadczalnie wykazano, że kwercetyna (czę­

sto spożywany z dietą flawonol) poprzez blokowanie produkcji prozapalnych cytokin i zmniejszanie eks­

presji iNOS i syntezy NO w komórkach mikrogle­

ju blokuje stan zapalny w neuronach. Może też ha­

mować w nich aktywację NF­κB, zapobiegając tym samym śmierci neuronów. Zaobserwowano rów­

nież, że flawonoidy występujące w borówkach oraz kwercetyna (1–30 μM), katechiny i galusan epiga­

lokatechiny (1–50 μM) hamują w aktywnych ko­

mórkach glejowych produkcję NO∙, IL­1β i TNF­α, łagodząc w ten sposób stan zapalny w neuronach [42]. Wykazano także, że flawanole i ich metabo­

lity [np. epikatechina i 3’­O­metylo­epikatechina

(10­300 nM)] mogą hamować w mózgu in vivo uszkodzenia neuronów indukowane stresem oksy­

dacyjnym nie tylko dzieki działaniu antyoksyda­

cyjnemu, ale również poprzez modulację szlaków sygnałizacyjnych kinazy PI3 (PI3K)/Akt, JNK i ak­

tywację kaspazy 3. Z kolei cytrusowe flawano­

ny (np. hesperedyna i jej metabolity, w stężeniu 10–300 nM) hamują apoptozę neuronów induko­

waną stresem oksydacyjnym poprzez mechanizm aktywacji/fosforylacji białek ścieżek sygnałowych prożyciowych. Natomiast naryngenina, również obecna w cytrusach (300 nM), hamując szlak sy­

gnalizacyjny p38 MAPK, aktywuje transkrypcję białek rodziny­1, zmniejsza ekspresję iNOS i syn­

tezę NO, dzięki czemu może skutecznie zmniej­

szać aktywację komórek glejowych. Łagodzenie stanu zapalonego w neuronach z udziałem naryn­

geniny polega również na hamowaniu produkcji TNF­α [16].

Zaobserwowano, że wyższe spożycie owoców oraz warzyw jest odwrotnie skorelowane z stęże­

niem markerów zapalnych we krwi (np. CRP, IL­6).

Z kolei interwencja żywieniowa u 120 osób (kobie­

ty i mężczyźni w wieku 40–74 lat), polegająca na spożywaniu przez 3 tygodnie ekstraktu z borówek, bogatych w antocyjany i antocyjanidyny, w ilości 300 mg/dzień, powodowała zmniejszenie w osoczu stężenia NF­kB, prozapalnych cytokin i chemokin (IL­4, IL­13, IL­8 i IFN­α). Również krótkotrwałe spożycie herbarty czarnej (900 ml/dziennie) przez 4 tygodnie obniżyło stężenia CRP u osób z chorobą tętnic wieńcowych [43].

Większość badań właściwości przeciwzapalnych flawonoidów przeprowadzana była z wykorzysta­

niem pojedynczych aglikonów flawonoidowych w stężeniach wyższych niż fizjologiczne. Nato­

miast wyniki badań właściwości przeciwzapalnych, w których stosowano fizjologicznie osiągalne u ludzi stężenia flawonoidów nie są często spójne i jedno­

znaczne. Dlatego istnieje konieczność przeprowa­

dzenia szczegółowych i prospektywnych obserwacji epidemiologicznych oraz randomizowanych badań klinicznych z większą liczbą osób, dłuższą obserwa­

cją u zdrowych ochotników i osób chorych.

Podsumowanie

Dieta bogata w związki flawonoidowe, jak i czy­

ste flawonoidy ma wpływ na pamięć, uczenie się i inne funkcje poznawcze dzięki zdolności do ochro­

ny neuronów przed uszkodzeniami wywołanymi przez neurotoksyny i stan zapalny oraz poprawy przepływu krwi naczyń mózgowych i sygnalizacji synaptycznej.

Poprawa zdolności poznawczych przez flawo­

noidy i ich metabolity jest możliwa nie tylko dzię­

ki ich działaniu antyoksydacyjnemu, ale również

B I O C H E M I A FA R M A C E U T Y C Z N A

aktywacji szlaków sygnalizacyjnych, które są punk­

tem krytycznym w zmniejszaniu stanu zapalne­

go, kontrolowaniu plastyczności synaptycznej, re­

gulacji przepływu krwi w naczyniach mózgowych i we wzroście nowych komórek nerwowych w hi­

pokampie. Mechanizmy te są odpowiedzialane za utrzymanie optymalnej funkcji neuronów, ograni­

czanie neurodegeneracji i zapobieganie pogorszaniu się zdolności poznawczych.

Takie działanie wywołuje korzystne zmiany w strukturach mózgu odpowiedzialnych za proce­

sy poznawcze (pamięć i uczenie się), co zapewnia bardziej efektywne pobieranie, przechowywanie, przetwarzanie i odtwarzanie informacji. Ponadto takie interakcje chronią również mózg przed utratą neuronów związaną ze starzeniem się, co jest szcze­

gólnie istotne, ponieważ wiadomo, że struktura mózgu pogarsza się wraz z wiekiem. Straty w po­

pulacji neuronów i połączeń synaptycznych obni­

żają z wiekiem zdolności do przetwarzania i odtwa­

rzania informacji.

Wiele opublikowanych danych wskazuje, że konsumpcja przez całe życie owoców bogatych w flawonoidy (takich jak: jagody, borówki, jabłka i owoce cytrusowe i inne), które mają neuroprotek­

cyjny potencjał, może ograniczyć lub nawet odwró­

cić zależne od wieku pogorszenie pamięci i zdolno­

ści poznawczych.

Jednak istnieje wiele wątpliwości i szereg py­

tań do rozstrzygnięcia. Przede wszystkim w chwili obecnej nie ma wiarygodnych danych na poparcie związku przyczynowo­skutkowego między spoży­

ciem flawonoidów a funkcjami poznawczymi u lu­

dzi. Nie wiadomo, kiedy w celu uzyskania maksy­

malnych korzyści z działania flawonoidów należy rozpocząć ich spożywanie i jak długo. Nie jest rów­

nież jasne, które flawonoidy są najbardziej sku­

teczne w wywoływaniu tych zmian. Ze względu na intensywne poszukiwania naturalnych związków wykazujących korzystny wpływ na pamięć i ucze­

nie się, w świetle aktualnego stanu wiedzy, flawo­

noidy mogą być istotnymi czynnikami/składnikami do opracowania nowej generacji leków/suplemen­

tów nie tylko o działaniu neuroprotekcyjnym, ale również neuropoznawczym. Dlatego w celu usta­

lenia, czy flawonoidy i/lub ich metabolity in vivo mogą działać ochronnie/skutecznie u osób dotknię­

tych demencją i innymi schorzeniami neurodegene­

racyjnymi, konieczne są rygorystyczne randomizo­

wane i kontrolowane badania kliniczne.

Otrzymano: 2017.01.26 · Zaakceptowano: 2017.02.28

Piśmiennictwo

1. Loef M., Walach H.: Fruit, vegetables and prevention of cognitive dec­

line or dementia: a systematic review of cohort studies. J. Nutr. Health Aging. 2012,16(7): 626–630.

2. Vauzour D.: Dietary polyphenols as modulators of brain functions:

biological actions and molecular mechanisms underpinning their be­

neficial effects. Oxid.Med. Cell Longev. 2012, ID 914273, str. 16.

3. Macready A.L, Kennedy O.B., Ellis J.A. Williams C.M., Jeremy P. E.

Spencer J.P.E., Butler L.T.: Flavonoids and cognitive function: a re­

view of human randomized controlled trial studies and recommen­

dations for future studies. Genes Nutr. 2009, 4(4): 227–242.

4. Spencer J.P.E.: Flavonoids and brain health: multiple effects under­

pinned by common mechanisms. Genes Nutr. 2009, 4(4): 243–250.

5. Spencer J.P.E., El Mohsen M.M.A., Minihane A.M., Mathers J.A: Bio­

markers of the intake of dietary polyphenols: strengths, limitations and application in nutrition research. Br. J. Nutr. 2007, 99(1): 12­22.

6. Spencer J.P.E., El Mohsen M.M.E., Rice­Evans C.: Cellular uptake and metabolism of flavonoids and their metabolites: implications for the­

ir bioactivity. Arch. Biochem. Biophys. 2004, 423(1): 148–161.

7. Perez­Vizcaino F., Duarte J., Santos –Buelga C.: The flavonoid para­

dox: conjugation and deconjugation as key steps for the biological ac­

tivity of flavonoids. J. Sci. Food Agric. 2012, 92(9): 1822–1825.

8. Youdim K.A., Shukitt­Hale B., Joseph J.A.: Flavonoids and the brain:

interactions at the blood–brain barrier and their physiological effects on the central nervous system. Free Radic Biol Med. 2004, 37(11):

1683–1693.

9. Spencer J.P.E.: Flavonoids: modulators of brain function? Br. J. Nutr.

2008, 99(1): 60–77.

10. Vauzour D., Vafeiadou K., Rodriguez­Mateos A., Rendeiro C., Spen­

cer J.P.E.: The neuroprotective potential of flavonoids: a multiplicity of effects. Genes Nutr. 2008, 3(3–4): 115–126.

11. Spencer J.P.E.: The impact of fruit flavonoids on memory and cogni­

tion. Br. J. Nutr. 2010, 104 (3): 40–47.

12. Joseph J.A., Shukitt­Hale B., Lau F.C.: Fruit polyphenols and their effects on neuronal signaling and behavior in senescence. Ann. N. Y.

Acad. Sci. 2007, 1100: 470–485.

13. Shukitt­Hale B., Carey A., Simon.L., Mark D.A., Joseph J.A.: Effects of Concord grape juice on cognitive and motor deficits in aging. Nu­

trition. 2006, 22(3): 295–302.

14. Weinreb O., Amit, T., Mandel S., Youdim M.B.H.: Neuroprotective molecular mechanisms of (−)­epigallocatechin­3­gallate: a reflecti­

ve outcome of its antioxidant, iron chelating and neuritogenic pro­

perties. Genes Nutr. 2009, 4(4): 283–296.

15. Williams C.M., El Mohsen M.A., Vauzour D., Rendeiro C., Butler LT., Ellis J.A., Whiteman M., Spencer J.P.E.: Blueberry­induced changes in spatial working memory correlate with changes in hippocampal CREB phosphorylation and brain­derived neurotrophic factor (BDNF) levels. Free Radic. Biol. Med. 2008, 45(3): 295–305.

16. Vauzour D., VafeiAdou K., Rice­Evans C., Williams R.J., Spencer J.P.E.:

Activation of pro­survival Akt and ERK1/2 signalling pathways un­

derlie the anti­apoptotic effects of flavanones in cortical neurons. J.

Neurochem. 2007, 103(4): 1355–1367.

17. Mandel S.A., Amit T., Kalfon L., Reznichenko L., Weinreb O., Youdim M.B.: Cell signaling pathways and iron chelation in the neuroresto­

rative activity of green tea polyphenols: special reference to epigal­

locatechin gallate (EGCG). J. Alzheimers Dis. 2008, 15: 211–222.

18. Letenneur L., Proust­Lima C., Le Gouge A., Dartigues J.F., Barber­

ger­ Gateau P.: Flavonoid intake and cognitive decline over a 10­year period. Am. J. Epidemiol. 2007, 165(12): 1364–1371.

19. Hartman R.E., Shah A., Fagan A.M., Schwetye K.E., Parsadanian M., Schulman R.N., Finn M.B., Holtzman D.M.: Pomegranate juice decre­

ases amyloid load and improves behavior in a mouse model of Alzhe­

imer’s disease. Neurobiol. Dis. 2006, 24(3): 506–515.

20. Shukitt­Hale B., Cheng V., Joseph J.A.: Effects of blackberries on mo­

tor and cognitive function in aged rats. Nutr. Neurosci. 2009, 12(30):

135–140.

21. Willis L.M., Shukitt­Hale B., Joseph J.A.: Recent advances in berry supplementation and age­related cognitive decline. Curr. Opin. Clin.

Nutr. Metab. Care. 2009, 12(1): 91–94.

22. van Praag H., Lucero M.J., Yeo G.W., Stecker K., Heivand N,, Zhao C,, Yip E,, Afanador M,, Schroeter H,, Hammerstone J,, Gage F.H.: Plant­

­derived flavanol − epicatechin enhances angiogenesis and retention of spatial memory in mice. J. Neurosci. 2007, 27(22): 5869–5878.

23. Joseph J.A, Shukitt­Hale B., Willis L.M.: Grape juice, berries, and walnuts affect brain aging and behavior. J. Nutr. 2009, 139(9):

1813–1817.

24. Spencer J.P.E.: The interactions of flavonoids within neuronal signal­

ling pathways. Genes Nutr. 2007, 2(3): 257–273.

25. Schroeter H., Bahia P., Spencer J.P.E., Sheppard O., Rattray M., Ca­

denas E., Rice­Evans C., Williams R.J.: (−)­Epicatechin stimulates ERK­dependent cyclic AMP response element activity and upre­

gulates GLUR2 in cortical neurons.J. Neurochem. 2007, 101(6):

1596–1606.

26. Czeczot H.: Potencjał neuroprotekcyjny flawonoidów. Farm. Pol.

2016, 2(11): 745–751.

27. `Spencer J.P.E., Rice­Evans C., Williams R.J.: Modulation of pro­su­

rvival Akt/protein kinase B and ERK1/2 signaling cascades by quer­

cetin and its in vivo metabolites underlie their action on neuronal via­

bility. J. Biol. Chem. 2003, 278(37): 34783–34793.

28. Ramirez M.R., Izquierdo I., do Carmo Bassols Raseira M., Zuanazzi J.A., Barros D., Henriques A.T.: Effect of lyophilised Vaccinium ber­

ries on memory, anxiety and locomotion in adult rats. Pharmacol Res.

2005, 52(6): 457–462.

29. Maher P., Akaishi T., Abe K.: Flavonoid fisetin promotes ERKdepen­

dent long­term potentiation and enhances memory. Proc Natl Acad Sci. USA. 2006, 103(44): 16568–16573.

30. Kesse­Guyot E., Fezeu L., Andreeva V.A., Touvier M., Scalbert A., Hercberg S., Galan P.: Total and specific polyphenol intakes inmidli­

fe are associated with cognitive function measured 13 years later. J.

Nutr. 2012, 142(1): 76–83.

31. Devore E.E., Kang J.H., Breteler M.M., Grodstein F.: Dietary intakes of berries and flavonoids in relation to cognitive decline. Ann. Neu­

rol. 2012, 72(10): 135–143.

32. Rendeiro C., Vauzour D., Rattray M., Waffo­Teguo P., Merillon J.M., Butler L.T.,Williams C.M., Spencer J.P.E.:Dietary levels of pure fla­

vonoids improve spatial memory performance and increase hippo­

campal brain­derived neurotrophic factor. PLoS One. 2013, 8(5):

e63535.

33. Patel A.K., Rogers J.T., Huang X.: Flavanols, mild cognitive impair­

ment, and Alzheimer’s dementia. Int. J. Clin. Exp.Med. 2008, 1(2):

181–191.

34. Field D.T., Williams C.M., Butler L.T.: Consumption of cocoa flava­

nols results in an acute improvement in visual and cognitive func­

tions. Physiol. Behav. 2011, 103(3–4): 255–260.

35. Scholey A.B., French S.J., Morris P.J., Kennedy D.O., Milne A.L, Haskell C.F.: Consumption of cocoa flavanols results in acute

improvements in mood and cognitive performance during sustained mental effort. J. Psychopharmacol. 2010, 24: 1505–1551.

36. Kalisz O., Wolski T., Gerkowicz M.: Ginkgo biloba and its preparations in therapy of cerebral and peripheral circulation disorders. Ann. Univ.

Mariae Curie Skłodowska. 2006, 61(2): 11–24.

37. Kay C.D., Hooper L., Kroon P.A., Rimm E.B., Cassidy A.: Relative im­

pactof flavonoid composition, dose and structure on vascular func­

tion: a systematic review of randomised controlled trials of flavonoid­

­rich food products. Mol. Nutr. Food. Res. 2012, 56(11): 1605–1616.

38. Schroeter H., Heiss C., Balzer J., Kleinbongard P., Keen C.L., Hollen­

berg N.K, Sies H., Kwik­Uribe C., Schmitz H.H., Kelm M.: (−)­Epi­

catechin mediates beneficial effects of flavanol rich cocoa on vascu­

lar function in humans. Proc. Nat.l Acad. Sci. USA. 2006, 103(4):

1024–1029.

39. Fisher N.D., Sorond F.A., Hollenberg N.K.: Cocoa flavanols and bra­

in perfusion. J Cardiovasc Pharmacol. 2006, 47(2): 210–214.

40. Sorond F.A., Lipsitz L.A., Hollenberg N.K., Fisher N.D: Cerebral blo­

od flow response to flavanol­rich cocoa in healthy elderly humans.

Neuropsychiatr. Dis. Treat. 2008, 4(2): 433–440.

41. Mandel S., Youdim M.B.: Catechin polyphenols: neurodegeneration and neuroprotection in neurodegenerative diseases. Free Radic. Biol.

Med. 2004, 37(93): 304–317.

42. Lau F.C., Bielinski D.F., Joseph J.A.: Inhibitory effects of blueberry extract on the production of inflammatory mediators in lipopoly­

saccharide­activated BV2 microglia. J. Neurosci. Res. 2007, 85(5):

1010–1017.

43. VafeiAdou K., Vauzour D., Lee H.Y., Rodriguez­Mateos A., Williams R.J., Spancer J.P.E.: The citrus flavanone naringenin inhibits inflam­

matory signalling in glial cells and protects against neuroinflamma­

tory injury. Arch. Biochem. Biophys. 2009, 484(1): 100–109.

B I O C H E M I A FA R M A C E U T Y C Z N A

hem

Fe

3+

CO O2

W dokumencie [2017/Nr 3] Nr 3/2017 (pełna wersja) (Stron 49-53)

Powiązane dokumenty