• Nie Znaleziono Wyników

[2017/Nr 2] Nr 2/2017 (pełna wersja)

N/A
N/A
Protected

Academic year: 2022

Share "[2017/Nr 2] Nr 2/2017 (pełna wersja)"

Copied!
65
0
0

Pełen tekst

(1)

tom 73 · nr 2 rok 2017 luty issn 0014‑8261

„Farmacja Polska” ukazuje się raz w miesiącu. Pre­

numeratorami czasopisma są farmaceuci, apte­

ki ogólnodostępne i szpitalne, hurtownie farma­

ceutyczne, producenci środków farmaceutycznych i materiałów medycznych. Pismo dociera też do sa­

morządu aptekarskiego, Naczelnej Izby Lekarskiej, okręgowych izb lekarskich, lekarzy wojewódzkich oraz niektórych bibliotek.

Cena prenumeraty krajowej na rok 2017 wynosi 233,10 zł (w tym 5% VAT), zagranicznej – 200 USD.

Emeryci – członkowie Polskiego Towarzystwa Far­

maceutycznego otrzymują zniżkę 50%, toteż na blankiecie wpłaty należy podać numer emerytury.

W dziale finansowym PTFarm można nabywać po­

jedyncze zeszyty czasopisma. Prenumeratę należy opłacać w dowolnym banku lub urzędzie poczto­

wym na rachunek bankowy:

Polskie Towarzystwo Farmaceutyczne

Millennium SA 29 1160 2202 0000 0000 2770 0281

„Farmacja Polska” zamieszcza płatne reklamy.

Redakcja nie ponosi odpowiedzialności za treść ogłoszeń.

Redakcja nie zwraca niezamówionych materiałów.

Prezentowane przez autorów prace są wyrazem ich poglądów naukowych i redakcja nie ponosi za nie odpowiedzialności.

„Farmacja Polska” jest indeksowana w Chemi­

cal Abstracts, Analytical Abstracts, Biochemical Abstracts, International Pharmaceuticals Abstracts i EMBASE (Excerpta Medica).

Czasopismo jest także indeksowane w Index Copernicus (ICV = 34,80) oraz umieszczone na liś­

cie czasopism punktowanych Ministerstwa Nauki i Szkolnictwa Wyższego (8 pkt).

WSZELKIE PRAWA ZASTRZEŻONE

dr hab. Iwona Arabas (Warszawa), dr Lucyna Bułaś (Sosnowiec),

prof. dr hab. Zbigniew Fijałek (Warszawa), prof. dr hab. Barbara Filipek (Kraków), dr Katarzyna Hanisz (Łódź),

prof. dr hab. Renata Jachowicz (Kraków), prof. dr hab. Roman Kaliszan (Gdańsk), prof. dr hab. Elżbieta Mikiciuk­Olasik,

prof. dr hab. Miguel das Neves Afonso Cavaco (Lisbona, Portugalia), mgr Zbigniew Niewójt (Warszawa),

prof. dr hab. Krystyna Olczyk (Sosnowiec), prof. dr hab. Daria Orszulak­Michalak (Łódź), prof. dr hab. Jan Pachecka (Warszawa), prof. dr hab. Janusz Pluta (Wrocław), prof. dr hab. Wiesław Sawicki (Gdańsk), dr hab. Agnieszka Skowron (Kraków), prof. dr hab. Małgorzata Sznitowska, prof. Lidia Tajber (Dublin, Irlandia), dr Elwira Telejko (Białystok),

prof. dr hab. Marek Wesołowski (Gdańsk), prof. dr hab. Anna Wiela­Hojeńska,

prof. dr hab. Witold Wieniawski (Warszawa), dr hab. Katarzyna Winnicka (Białystok),

prof. dr hab. Andriy Zimenkovsky (Lwów, Ukraina), dr hab. Agnieszka Zimmermann

REDAKCJA

Redaktor naczelny: dr hab. Bożena Karolewicz Redaktor statystyczny: dr Dominik Marciniak Redaktor techniczny: Joanna Czarnecka Korekta: Izabela Pranga

ADRES REDAKCJI

00­238 Warszawa, ul. Długa 16, tel. 22 831 02 41 w. 12 WYDAWCA

Polskie Towarzystwo Farmaceutyczne

Dział Wydawnictw – Redaktor prowadzący: Hanna Plata 00­238 Warszawa, ul. Długa 16

tel./faks 22 635 84 43 tel. 22 831 02 41 w. 15

Kolportaż: tel. 22 831 79 63 w. 19, 20

e­mail: wydawnictwa@ptfarm.pl, zamowienia@ptfarm.pl Adres dla autorów: redakcja@ptfarm.pl

Strona PTFarm w Internecie: http://www.ptfarm.pl

ISSN 0014­8261

Skład i łamanie: Joanna Czarnecka

Druk: Oficyna Wydawniczo­Poligraficzna Zygmunt Siemieniak, Ząbki, tel. 22 781 51 02, faks 22 398 78 15, www.siemieniak.pl Nakład: 3500 egz.

Printed on acid­free paper.

(2)

tom 73 · nr 2 rok 2017 luty issn 0014‑8261

Spis treści

73 praca oryginalna · technologia postaci leku · Ocena morfologii mikrosfer zawierających kwas acetylosalicylowy uzyskanych w procesie suszenia rozpyłowego

Beata Sarecka-Hujar, Aleksandra Wadelik, Aneta Ostróżka-Cieślik, Andrzej Jankowski, Radosław Balwierz, Anna Banyś, Dominik Marciniak, Janusz Pluta

79 praca oryginalna · technologia postaci leku · Badanie stabilności recepturowej formy leku zawierającej hydrochlorotiazyd do stosowania u pacjentów pediatrycznych

Beata Welk-Piela, Andrzej Stańczak

84 praca oryginalna · farmacja społeczna · Leki sfałszowane w opinii pacjentów polskich aptek – jednoośrodkowe badanie pilotażowe

Emilia Szyling, Damian Świeczkowski, Urszula Włodarczak, Miłosz J. Jaguszewski, Jerzy Krysiński, Piotr Merks

92 terapia i leki · Postępy w farmakogenomice nerek i nowe perspektywy diagnostyczno-terapeutyczne w przewlekłej chorobie nerek

Anna Ziegler, Wiktor Krawczyk, Robert Derbiszewski, Robert Golonka, Małgorzata Mazurek-Mochol, Bolesław Banach

97 praca oryginalna · analiza farmaceutyczna · Zastosowanie TLC i densytometrii do ilościowego oznaczania paracetamolu i kofeiny w złożonym preparacie farmaceutycznym

Małgorzata Dołowy, Alina Pyka-Pająk

Farmacja po dyplomie

105 terapia i leki · Leki jako czynniki ryzyka rozwoju hiperglikemii oraz mechanizmy ich działania diabetogennego

Zofia Marchewka, Kamil Guzy, Anna Rorbach-Dolata, Agnieszka Piwowar 115 toksykologia farmaceutyczna · Udział czynników endo-

i egzogennych w indukowaniu hiperglikemii i glukotoksyczności – istotny problem XXI wieku w opiece nad pacjentem

Anna Rorbach-Dolata, Zofia Marchewka, Michał Stanek, Agnieszka Piwowar

124 farmakologia kliniczna · Ocena bezpieczeństwa terapii inhibitorami konwertazy angiotensyny u chorych na cukrzycę

Piotr Milejski, Kamila Stasyszyn

129 analiza famraceutyczna · Zastosowanie spektroskopii

magnetycznego rezonansu jądrowego (NMR) w fazie stałej w farmacji Dariusz Maciej Pisklak, Łukasz Szeleszczuk, Monika Zielińska-Pisklak

Table of Contents

73 original article · technology of drug form · Assessment of morphology and size of the microspheres containing acetylsalicylic acid obtained by spray drying

Beata Sarecka-Hujar, Aleksandra Wadelik, Aneta Ostróżka-Cieślik, Andrzej Jankowski, Radosław Balwierz, Anna Banyś, Dominik Marciniak, Janusz Pluta

79 original article · technology of drug form · The stability study of pharmaceutical dosage formulation with hydrochlorothiazide used in pediatric patients

Beata Welk-Piela, Andrzej Stańczak

84 original article · social pharmacy · Falsified Medicines in the opinion of Polish patients in community pharmacy – one centered pilot study Emilia Szyling, Damian Świeczkowski,

Urszula Włodarczak, Miłosz J. Jaguszewski, Jerzy Krysiński, Piotr Merks

92 therapy and drug · Advances in

pharmacogenomics of the kidneys and therapeutic prospects of chronic kidney disease

Anna Ziegler, Wiktor Krawczyk, Robert Derbiszewski, Robert Golonka, Małgorzata Mazurek-Mochol, Bolesław Banach

97 original article · pharmaceutical

analysis · Application of TLC and densitometry for the determination of paracetamol and caffeine in combined pharmaceutical formulation

Małgorzata Dołowy, Alina Pyka-Pająk

Postgraduate pharmacy

105 therapy and drug · Drugs as a risk factors of hyperglycemia development and mechanisms of its diabetogenic actions

Zofia Marchewka, Kamil Guzy,

Anna Rorbach-Dolata, Agnieszka Piwowar 115 pharmaceutical toxycology · The participation

of endo- and exogenous agents in the induction of hyperglycemia and glucotoxicity – an important problem in the XXI century patient care Anna Rorbach-Dolata, Zofia Marchewka, Michał Stanek, Agnieszka Piwowar

124 clinical pharmakology · Severity of ADR of ACEI in diabetes patients

Piotr Milejski, Kamila Stasyszyn

129 drug chemistry · Application of solid state Nuclear Magnetic Resonance spectroscopy (NMR) in pharmacy

Dariusz Maciej Pisklak, Łukasz Szeleszczuk, Monika Zielińska-Pisklak

(3)

(rzadziej do 1000 µm), w których substancja czyn­

na jest inkorporowana (zawieszona, rozpuszczona lub emulgowana) w matrycę polimerową. Mogą one

Wstęp

Opracowanie postaci leku o przedłużonym i/

lub docelowym uwalnianiu substancji leczniczej w organizmie pacjenta jest jednym z najważniej­

szych osiągnięć współczesnej terapii. Preparaty te umożliwiają stopniowe uwalnianie odpowied­

nich ilości leku w określonym czasie, w odróżnie­

niu od konwencjonalnego postępowania terapeu­

tycznego, w którym substancja lecznicza uwalnia się z postaci leku, rozpuszcza w otaczającym pły­

nie ustrojowym, a następnie wchłania do krąże­

nia ogólnego [1]. Powoduje to najczęściej szybki wzrost stężenia leku we krwi oraz szybką jego eli­

minację z ustroju, a w konsekwencji konieczność wielokrotnego podawania leku w ciągu doby. Po­

stacie leku o modyfikowanym uwalnianiu wykazu­

ją szereg zalet: chronią substancję leczniczą przed inaktywacją, poprawiają komfort pacjenta w przyj­

mowaniu leku (zmniejszenie ilości podawanych dawek, maskowanie nieprzyjemnego smaku i za­

pachu) oraz ograniczają możliwość wystąpienia działań niepożądanych [2].

Wśród postaci leku umożliwiających jego prze­

dłużone uwalnianie ważną rolę odgrywają ukła­

dy wielokompartmentowe, w których substancja lecznicza jest rozdzielona pomiędzy liczne nośniki:

mikrosfery, mikrokapsułki, nanosfery, nanokap­

sułki, liposfery [1]. Mikrosfery są to monolitycz­

ne cząstki sferyczne o wielkości 1 µm do 500 µm

Assessment of morphology and size of the microspheres containing

acetylsalicylic acid obtained by spray drying · Multi-compartement drug forms play an important role among the dosage forms of sustained release of the active substance in which drug substance is distributed between a number of carriers, such as: microspheres, microcapsules, nanospheres, nanocapsules or lipospheres. The aim of the study was to evaluate the morphology and size of the microspheres containing acetylsalicylic acid (ASA) as a model substance. Eudragit L100-55 as a polymer matrix was used in the study. The spray drying method was conducted in Büchi Mini Spray Dryer B – 191. The impact of the type and amount of the plasticizer on the quality of the final product was assessed. The morphology and size of the microspheres were evaluated using an optical microscope MEIJI MT4300H and particle size analyzer Mastersizer 3000 (Malvern, APInstruments).

Most preferred morphological characteristics of the ASA microspheres was obtained using the following spray drying parameters: inlet temperature – 130°C, aspirator efficiency – 70% and pump efficiency – 10%. The type and concentration of the plasticizer affect the morphology and particle size; most preferred were obtained when using 10% of triethyl citrate.

Microspheres of a more regular shape and a homogenous size were manufactured when drying the mixture with drug: polymer ratio of 1: 1.

Keywords: microspheres, spray drying, acetylsalicylic acid, Eudragit, a plasticizer.

© Farm Pol, 2017, 73(2): 73-78

Ocena morfologii mikrosfer

zawierających kwas acetylosalicylowy

uzyskanych w procesie suszenia rozpyłowego

Beata Sarecka-Hujar

1

, Aleksandra Wadelik

1

, Aneta Ostróżka-Cieślik

1

, Andrzej Jankowski

1

, Radosław Balwierz

1,2

, Anna Banyś

1

, Dominik Marciniak

3

, Janusz Pluta

3,4

1 Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach, Wydział Farmaceutyczny z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej w Sosnowcu, Katedra Farmacji Stosowanej, Zakład Technologii Postaci Leku, ul. Kasztanowa 3, 41­200 Sosnowiec

2 Śląska Wyższa Szkoła Medyczna w Katowicach, Wydział Ochrony Zdrowia, ul. Mickiewicza 29, Katowice

3 Uniwersytet Medyczny im. Piastów Śląskich we Wrocławiu, Wydział Farmaceutyczny z Odziałem Analityki Medycznej, Katedra i Zakład Technologii Postaci Leku, Wrocław

4 Państwowa Medyczna Wyższa Szkoła Zawodowa w Opolu, Katedra Farmakologii, Opole

Adres do korespondencji: Beata Sarecka­Hujar, Zakład Technologii Postaci Leku, Katedra Farmacji Stosowanej, Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach, ul. Kasztanowa 3, 41­200 Sosnowiec, e­mail: beatasarecka@poczta.onet.pl

(4)

być zarówno docelową postacią leku, jak również półproduktem do uzyskania tabletek lub kapsułek [1–3]. Wykazują szereg zalet, w tym: możliwość przenoszenia nietrwałych substancji (np. kwasy nu­

kleinowe czy białka), wykorzystanie różnych dróg podania w zależności od ich wielkości, stabilizacja inkorporowanej substancji i ochrona przed inakty­

wacją, wysoka biozgodność, biodostępność, zwięk­

szenie komfortu pacjenta i zmniejszenie możliwo­

ści nagłego uwolnienia zbyt dużej ilości substancji czynnej [1–6]. Oprócz zalet, wykazują jednak wady:

są nietrwałe, dlatego przechowuje się je w postaci liofilizowanej, w suchym, chłodnym miejscu, z dala od dostępu światła i wilgoci; nie zaleca się podda­

wać ich procesowi wyjaławiania, w zamian można zastosować promieniowanie gamma lub odpowied­

nio zmodyfikować technologię wytwarzania; ob­

serwuje się także straty substancji czynnej w trak­

cie ich wytwarzania [1–3, 5].

Istnieje wiele metod sporządzania mikrosfer:

emulsyjne, ekstruzji, koacerwacji, topliwej dys­

persji, sieciowania oraz suszenie rozpyłowe. Wybór odpowiedniej technologii wytwarzania mikrosfer wiąże się ściśle z właściwościami fizycznymi i che­

micznymi substancji leczniczej oraz przeznaczeniem i docelową wielkością mikrosfer [1, 2, 7]. Metodą najczęściej stosowaną do inkorporowania substan­

cji czynnych w matryce polimerowe jest suszenie rozpyłowe, głównie z uwagi na niezawodność, po­

wtarzalność i możliwość kontroli wielkości czą­

stek. Ponadto jest to proces ciągły, który można ła­

two modyfikować i tylko nieznacznie zależy on od rozpuszczalności leku i polimeru [5, 8].

Kwas acetylosalicylowy (wg nazewnictwa IU­

PAC kwas 2­acetoksybenzoesowy, acetylsalicylic acid, ASA) został wybrany w niniejszej pracy jako substancja modelowa. Jest on acetylową pochod­

ną kwasu salicylowego, nieodwracalnym inhibito­

rem cyklooksygenazy­1 (COX­1). Zaliczany jest do niesteroidowych leków przeciwzapalnych (NLPZ) i wykazuje działanie przeciwbólowe, przeciwza­

palne, przeciwgorączkowe i przeciwzakrzepowe.

Celem pracy była ocena morfologii i wielko­

ści mikrosfer zawierających kwas acetylosalicy­

lowy, uzyskanych z wykorzystaniem techniki suszenia rozpyłowego, ze szczególnym uwzględ­

nieniem wpływu ilości polimeru oraz stężenia za­

stosowanego plastyfikatora na jakość produktu końcowego.

Materiały i metody

Odczynniki

W pracy wykorzystano następujące odczyn­

niki: chlorek sodu (Chempur, Polska), cytrynian trietylu (Sigma – Aldrich, USA), triacetyna (Carl Roth GmbH + Co. KG, Niemcy), 2­acetylocytry­

nian trietylu (Sigma – Aldrich, USA), diwodorofos­

foran potasu (Chempur, Polska), Eudragit L100­55 ( Evonik, Niemcy), kwas solny 35% (Chempur, Polska), kwas acetylosalicylowy (Galfarm, Pol­

ska), talk (Amara, Polska), wodorofosforan di­

potasu (POCh S.A., Polska), wodorotlenek sodu (POCh S.A., Polska).

Technologia wytworzenia mikrosfer W celu otrzymania mikrosfer jako matrycę poli­

merową zastosowano kopolimer kwasu metakrylo­

wego (Eudragit L100­55). Przygotowano jego dys­

persję wodną zgodnie z wymogami producenta, która odpowiada jakościowo 30% dyspersji wodnej Eudragitu L30D55 [9]. Zastosowano dwa stosunki lek:polimer – 1:1 i 1:2. Ilości składników mieszani­

ny poddanej suszeniu przedstawia tabela 1. Susze­

nie rozpyłowe przeprowadzono z użyciem suszarki Büchi Mini Spray Dryer B – 191 przy trzech nie­

zmiennych parametrach: ciśnienie – 3,5 bar, szyb­

kość przepływu – 600 l/h oraz wydajność aspira­

tora – 10%. Optymalizację parametrów suszenia rozpyłowego przeprowadzono dla mikrosfer za­

wierających Eudragit L100­55 w stosunku 1:1 do substancji leczniczej, z zastosowaniem cytrynianu trietylu w ilości 10% jako plastyfikatora. W proce­

sie optymalizacji suszenia rozpyłowego zastosowano

Temperatura na wlocie [°C] Wydajność aspiratora [%] Wydajność pompy [%] Wielkość mikrosfer [μm] Morfologia uzyskanych mikrosfer

130 70 10 22,2-31,6 przewaga cząstek o kształcie kulistym, niewielka aglomeracja,

niewielkie zróżnicowanie wielkości

130 80 10 25,7-54,2 przewaga cząstek o kształcie kulistym,

obecność nieregularnych struktur, wielkość zróżnicowana

140 70 10 30,9-64,1 obecność cząstek o kształcie kulistym i nieregularnym,

duży stopień aglomeracji, wielkość zróżnicowana

140 80 10 29,5-55,4 obecność cząstek o kształcie kulistym i nieregularnym,

duży stopień aglomeracji, wielkość zróżnicowana

150 70 10 28,7-86,2 przewaga cząstek o nieregularnym kształcie,

niewiele form kulistych, duże zróżnicowanie wielkości

150 80 10 31,4-98,1 głównie cząstki o kształcie nieregularnym,

bardzo mało form kulistych, zróżnicowana wielkość Tabela 1. Parametry warunków optymalizacji suszenia rozpyłowego oraz charakterystyka uzyskanych mikrosfer

(5)

6 wariantów, zmieniając temperaturę na wlocie (130oC, 140oC, 150oC) oraz wydajność pompy (70%

i 80%) (tabela 2). W pracy analizowano wpływ ro­

dzaju plastyfikatora: cytrynian trietylu (d=1,14 g/

cm3), triacetyna (d=1,16 g/cm3), i 2­acetylocytry­

nian trietylu (d=1,14 g/cm3) oraz jego ilości: 10, 20 lub 30% dla każdego z plastyfikatorów, na ja­

kość końcowego produktu.

Ocena morfologii i wielkości uzyskanych mikrosfer

Morfologia i wielkość mikrosfer oceniane były przy użyciu mikroskopu optycznego MEIJI MT4300H z kamerą mikroskopową Moticam 3.

Średnica i powierzchnia cząstek mierzona była przy pomocy oprogramowania Motic Images Plus 2.0.

Dodatkowo, dla mikrosfer otrzymanych z mie­

szaniny o stosunku kwas acetylosalicylowy:Eudra­

git 1:2 z cytrynianiem trietylu jako plastyfikatorem (10%), wykonano badanie rozkładu wielkości czą­

stek przy użyciu analizatora wielkości cząstek Ma­

stersizer 3000 (Malvern; APInstruments) wyposa­

żonego w przystawki Hydro Sight i MV. Analizator umożliwia pomiary cząstek metodą dyfrakcji lase­

rowej w zakresie od 0,01 µm do 3500 µm, w opar­

ciu o model Fraunhofera. Przed pomiarem wyko­

nano stabilną dyspersję mikrosfer o stosunku kwas acetylosalicylowy:Eudragit 1:2 w wodzie z surfak­

tantem, która podczas analizy poddana została dzia­

łaniu ultradźwięków w celu usunięcia ewentualnych aglomeratów. Otrzymane wyniki przedstawione są jako zależność między objętością (w%) i śred­

nicą cząstek, a zatem w postaci frakcji cząstek da­

nej wielkości.

Analiza statystyczna

Analizę statystyczną przeprowadzono za pomocą programu Statistica 12 (STATSOFT; Statistica, Tul­

sa, OK, USA). W pracy porównano średnicę i po­

wierzchnię mikrosfer z kwasem acetylosalicylowym i Eudragitem L100­55 w stosunkach 1:1 i 1:2, w za­

leżności od stężenia danego plastyfikatora. Ocenę zgodności rozkładu z rozkładem normalnym prze­

prowadzono testem W Shapiro­Wilka. Dla danych o rozkładzie normalnym przeprowadzono test pa­

rametryczny t­studenta, natomiast przy braku roz­

kładu normalnego stosowano test nieparametrycz­

ny U Manna­Whitneya. Jako istotne statystycznie przyjmowano te wartości, dla których p<0,05.

Wyniki

Optymalizacja procesu suszenia rozpyłowego

Mikrosfery o najkorzystniejszej morfologii uzy­

skano przy następujących parametrach technolo­

gicznych procesu suszenia: temperatura na wlocie – 130oC, wydajność aspiratora – 70% i wydajność pompy – 10% (tabela 1). Przeważały wśród nich cząstki o kształcie kulistym, z niewielką tendencją do aglomeracji, jak również nieznacznym zróżnico­

waniem wielkości.

Analiza wpływu ilości zastosowanego polimeru

na wielkość i morfologię mikrosfer W pracy zastosowano Eudragit L100­55 w ilości 1:1 i 2:1 w stosunku do substancji modelowej. Zaob­

serwowano, że podwojenie ilości polimeru Eudragit

Kwas acetylosalicylowy: EudragitL100-55 w stosunku 1:1

Rodzaj plastyfikatora CYTRYNIAN TRIETYLU TRIACETYNA 2-ACETYLOCYTRYNIAN TRIETYLU

Stężenie plastyfikatora 10% 20% 30% 10% 20% 30% 10% 20% 30%

Średnica [µm]

Średnia±SD Mediana (Min-Max)

26,04±2,87 26,90 (22,60-31,40)

32,97±6,01 33,40 (23,80-40,90)

35,05±5,96 35,85 (25,50–42,70)

33,96±3,82 34,25 (26,00-41,00)

39,16±6,59 40,95 (28,30-45,90)

41,30±6,46 41,30 (33,20–53,90)

40,89±6,77 39,90 (33,50-55,30)

33,11±3,24 33,10 (26,20-37,90)

47,90±7,39 49,30 (36,40–58,10) Powierzchnia [µm2]

Średnia±SD Mediana (Min-Max)

562,70±151,13 543,25 (369,50-781,50)

878,90±291,20 804,50 (539,50-1571,00)

929,80±189,09 886,30 (671,50-1323,00)

861,25±112,12 891,75 (710,50-1032,50)

1275,90±366,39 1348,50 (707,00-1806,50)

1288,90±291,53 1215,25 (1016,50-1982,00)

1195,25±325,03 1122,50 (782,50-1796,50)

649,05±119,88 592,50 (541,00-897,50)

1780,95±758,34 1746,50 (901,50-3267,50) Kwas acetylosalicylowy: EudragitL100-55 w stosunku 1:2

Rodzaj plastyfikatora CYTRYNIAN TRIETYLU TRIACETYNA 2-ACETYLOCYTRYNIAN TRIETYLU

Stężenie plastyfikatora 10% 20% 30% 10% 20% 30% 10% 20% 30%

Średnica [µm]

Średnia±SD Mediana (Min-Max)

39,61±5,78 37,80 (34,40-53,00)

34,56±2,22 34,20 (32,00-39,00)

40,78±6,27 39,00 (30,10–49,40)

46,45±10,02 43,30 (35,50-60,80)

51,22±10,43 52,05 (37,60-67,10)

38,68±3,08 39,00 (34,00–43,20)

31,66±4,81 31,45 (22,50-38,60)

39,51±4,87 39,10 (32,10-47,90)

36,00±5,39 35,85 (28,70–45,60) Powierzchnia [µm2]

Średnia±SD Mediana (Min-Max)

1207,45±439,99 1055,50 (882,0-2381,00)

860,60±112,25 845,25 (781,00-1117,50)

1326,00±388,11 1325,25 (672,0-1961,50)

1576,60±884,06 1058,25 (755,5-3373,00)

1684,40±698,69 1586,00 (958,50-2587,00)

1299,55±477,05 1058,25 (846,50-2132,00)

1122,50±294,42 1005,50 (845,00-1658,50)

2126,50±691,14 1925,0 (1326,0-3241,0)

1341,75±291,26 1407,75 (949,50-1740,00) Tabela 2. Charakterystyka wielkości mikrosfer w zależności od ilości zastosowanego Eudragitu L100­55

(6)

L100­55 w stosunku do ASA skutkuje zwiększe­

niem średnicy mikrosfer, jednak tylko w przypadku zastosowania jako plastyfikatorów cytrynianu trie­

tylu i triacetyny. Natomiast dla mikrosfer z 2­acety­

locytrynianem trietylu jako plastyfikatorem stwier­

dzono znamiennie większe rozmiary przy stosunku lek:Eudragit 1:1 niż 1:2 (tabela 2).

Analiza wpływu rodzaju i ilości zastosowanego plastyfikatora na wielkość i morfologię mikrosfer

Każdy z plastyfikatorów stosowano w trzech stężeniach: 10, 20 i 30%. W przypadku mikrosfer o stosunku lek:polimer 1:1, w których jako plasty­

fikatora zastosowano cytrynian trietylu, stwierdzo­

no, że najbardziej jednorodne pod wzglądem wiel­

kości są mikrosfery zawierające cytrynian trietylu w stężeniu 10%. Zwiększanie jego ilości miało nie­

wielki wpływ na stopień agregacji cząstek. Powstałe mikrosfery były w większości kuliste, z pojedynczy­

mi formami nieregularnymi. Gdy do wytworzenia mikrosfer z ASA 1:1 użyto triacetyny, zaobserwo­

wano, że wraz ze wzrostem stężenia plastyfikatora rośnie również wielkość cząstek. Mikrosfery cha­

rakteryzowały się dużą regularnością kształtu, wy­

kazując jednak tendencje do tworzenia niewielkich aglomeratów. Z kolei stosując 2­acetylocytrynian trietylu, zauważono, że mikrosfery 1:1 mają ten­

dencję do tworzenia agregatów, zwłaszcza przy największym stężeniu plastyfikatora. Zdecydowa­

nie dominowały formy kuliste o dosyć jednorod­

nej wielkości.

Średnica i powierzchnia mikrosfer z ASA w sto­

sunku lek:Eudragit 1:1 zawierających 20% i 30%

cytrynianu trietylu była znamiennie wyższa niż mikrosfer z 10% dodatkiem cytrynianu triety­

lu (p<0.05) (tabela 2). Podobne wyniki uzyska­

no w przypadku zastosowania triacetyny jako

plastyfikatora. Z kolei dla mikrosfer zawierających 2­acetylocytrynian trietylu znamiennie większą średnicę i powierzchnię zaobserwowano w przy­

padku cząstek z 10% vs 20% oraz 30% vs 20%

i 10% 2­acetylocytrynianem trietylu (tabela 2).

Mikrosfery o stosunku lek:polimer 1:2, w któ­

rych jako plastyfikatora użyto cytrynianu triety­

lu, charakteryzowały się jednorodnością rozmiaru i kulistym kształtem, choć pojawiały się nieliczne nieregularne elementy. Niektóre cząstki tworzyły również dosyć duże aglomeraty. Oceniając mikros­

fer 1:2 z triacetyną, wykazano nieregularne kształty powstałych mikrocząstek z pojedynczymi kulistymi formami. Cząstki te nie wykazywały dużej tenden­

cji do agregacji. Mikrosfery 1:2 z 2­acetylocytrynia­

nem trietylu wykazywały natomiast tendencję do tworzenia aglomeratów. Cząstki charakteryzowa­

ły się zbliżoną wielkością, jednak wiele z nich nie­

regularnymi kształtami.

Analiza średnicy i powierzchni mikrosfer z ASA w stosunku lek:polimer 1:2 z cytrynianem trie­

tylu wykazała znamiennie większe oba parame­

try w przypadku zastosowania 30% w porównaniu do cząstek z jego 20% stężeniem. W mikrosferach z triacetyną znamiennie większa okazała się jedynie średnica cząstek z 20% zawartością plastyfikato­

ra w stosunku do mikrosfer z 10% i 30% (tabela 2).

Analiza rozkładu wielkości cząstek W analizie przeprowadzonej metodą dyfrakcji la­

serowej w analizatorze Mastersizer 3000 (Malvern) wykazano, że 50% cząstek charakteryzuje się wiel­

kością poniżej 40,3 µm i jest to wielkość porówny­

walna ze średnią wielkością mikrosfer ocenianych przy użyciu mikroskopu optycznego (tabela 2). 90%

mikrosfer ma natomiast wielkość poniżej 143 µm.

Najmniejsze zanalizowane tą metodą mikrosfery miały wielkość 0,523 µm (rycina 1).

Omówienie

Obecnie prowadzone są liczne badania nad kli­

nicznym zastosowaniem leków o modyfikowanym uwalnianiu, wśród których ważną grupę stanowią mikrosfery. W niniejszej pracy do wytworzenia mi­

krosfer zawierających kwas acetylosalicylowy jako substancję modelową wykorzystano technikę su­

szenia rozpyłowego. W procesie optymalizacji wy­

brano następujące wartości parametrów techno­

logicznych suszenia, przy zastosowaniu których otrzymano najbardziej korzystną morfologię czą­

stek: temperatura na wlocie – 130oC, wydajność aspiratora – 70% i wydajność pompy – 10%.

Istnieje wiele danych literaturowych dotyczą­

cych technologii uzyskiwania mikrosfer z kwasem acetylosalicylowym [10–16]. W niektórych wy­

korzystano suszenie rozpyłowe, wiele doniesień Rycina 1. Wyniki analizy rozkładu wielkości mikrosfer o stosunku kwas

acetylosalicylowy:Eudragit 1:2 wykonanej przy użyciu analizatora wielkości cząstek Mastersizer 3000 (Malvern, APInstruments)

(7)

wskazuje jednak na możliwość wykorzystania rów­

nież innych technik do wytworzenia mikrosfer z ASA, w tym metodę koacerwacji lub odparowa­

nia rozpuszczalnika [10–13, 15, 16].

W procesie suszenia rozpyłowego jednym z naj­

ważniejszych parametrów wpływających na mor­

fologię mikrosfer jest temperatura na wlocie. Jeśli jest ona niewłaściwie dobrana, powoduje powsta­

nie cząstek dużych i nieregularnych, co wykaza­

no w badaniach Año i wsp. [16]. W badaniach Lee i wsp. do uzyskania mikrosfer zawierających ASA zastosowano temperaturę na wlocie 130oC, ana­

logiczną do temperatury w niniejszej pracy [10].

Autorzy wykazali, że wytworzone w ten sposób mikrosfery charakteryzowały się średnimi rozmia­

rami równymi 24,4 μm lub 33,1 μm, w zależności od zastosowanego polimeru, w który inkorporowa­

ny był ASA i sferycznym kształtem. Innym równie ważnym parametrem technologicznym wpływają­

cym na charakterystykę otrzymywanych mikroczą­

stek jest wydajność pompy perystaltycznej. Esposito i wsp. wykazali, że niska wydajność pompy wpły­

wa na powstanie mikrosfer o korzystnej morfolo­

gii [17]. W obecnej pracy optymalne cechy mikros­

fer uzyskano przy wydajności pompy równej 10%.

W niniejszych badaniach do wytworzenia mi­

krosfer użyto kopolimeru kwasu metakrylowego – Eudragit L100­55 i zastosowano dwa stosunki le­

k:polimer – 1:1 oraz 1:2. Mikrosfery zawierające Eudragit L100­55 w proporcji 1:1 w stosunku do substancji leczniczej odznaczały się większą regu­

larnością kształtów i mniejszym stopniem agregacji.

Również za najkorzystniejszy stosunek lek:polimer w proporcji 1:1 w swoich badaniach uznała Walker [11]. W pracy Esposito i wsp., w których do wy­

tworzenia mikrosfer z prednizolonem użyto Eudra­

gitu RS, wykazano, że zwiększanie zawartości po­

limeru wpływa na stopniowe zwiększanie średnicy otrzymanych mikrocząstek, jednocześnie powodu­

jąc powstawanie półkolistych wypukłości na ich po­

wierzchni i zwiększoną ich skłonność do agregacji [17]. W obecnej pracy zaobserwowano, że podwo­

jenie ilości polimeru Eudragit L100­55 w stosunku do ASA skutkuje zwiększeniem średnicy mikrosfer, jednak tylko w przypadku zastosowania jako pla­

styfikatorów cytrynianu trietylu i triacetyny. Nato­

miast dla mikrosfer z 2­acetylocytrynianem trietylu jako plastyfikatorem stwierdzono większe rozmia­

ry przy stosunku lek:Eudragit 1:1 niż 1:2. Pogor­

szenie morfologii mikrosfer z losartanem potasu wraz ze wzrostem ilości polimeru zaobserwowano również w badaniach Jankowski i wsp. [5]. Matry­

ce z Eudragitu L100­55 nie są wystarczająco ela­

styczne, jednak właściwości mechaniczne polimeru ulegają poprawie w warunkach podwyższonej wil­

gotności, zatem zasadny jest dodatek plastyfikato­

ra [18]. Głównym celem pracy była ocena wpływu

plastyfikatora na morfologię mikrosfer z ASA. Jako plastyfikatory zostały użyte plastyfikatory hydro­

fobowe zadeklarowane w USP 35­NF 30: cytry­

nian trietylu, triacetyna oraz 2­acetylocytrynian trietylu, każdy w stężeniach 10%, 20% i 30%. Pla­

styfikatorem, którego dodatek wykazywał najko­

rzystniejszy wpływ na morfologię mikrosfer oka­

zał się cytrynianu trietylu, zastosowany w ilości 10%. Podobny wniosek wynika z pracy Jankow­

skiego i wsp., którzy optymalną morfologię mikros­

fer, zawierających losartan potasu jako substancję modelową, otrzymali również w przypadku zasto­

sowania cytrynianu trietylu, stosując go w ilości od 10 do 15% [5]. Autorzy analizowali także poten­

cjalny wpływ innego plastyfikatora – kwasu cytry­

nowego na morfologię powstałych cząstek, jednak okazał się on negatywny [5].

W badaniach Shi i wsp., wykorzystując techni­

kę suszenia rozpyłowego do wytworzenia mikros­

fer z ASA, użyto inny niż Eudragit polimer synte­

tyczny, a mianowicie kopolimer kwasu mlekowego i glikolowego (PGLA). Powstające mikrosfery PLGA­

­kwas acetylosalicylowy miały średnią średnicę równą 1,98±0,43 μm i charakteryzowały się kuli­

stym kształtem i gładką powierzchnią [13].

Istnieją również doniesienia o możliwości stoso­

wania polimerów naturalnych do wytworzenia mi­

krosfer z ASA [10–12, 15]. W badaniach Lee i wsp.

wykorzystano śluz z łusek babki jajowatej (Plantago ovata) oraz arabinoksylan, jednak uzyskane metodą suszenia rozpyłowego mikrosfery uznane zostały za nieudane, bowiem mikrosfery powstałe przy uży­

ciu śluzu babki jajowatej nie wykazywały kulistego kształtu i miały budowę krystaliczną [10]. W innych badaniach, aby otrzymać mikrosfery zawierające ASA w polimerze naturalnym, zastosowano tech­

nikę odparowania rozpuszczalnika, a w pracy Na­

scimento i wsp. metodę koacerwacji [11, 12, 15].

Uzyskane w badaniach Walker cząstki miały śred­

nicę odpowiednio ok. 193,4 μm, a w pracy Patel i wsp. w zakresie 328–990 µm i charakteryzowa­

ły się sferycznymi kształtami [11, 15]. W obu przy­

padkach jako polimeru użyto etylocelulozy. We­

dług Patel i wsp. zwiększająca się lepkość roztworu polimeru w miarę zwiększania jego stężenia wpły­

wa na powiększanie kropel zawiesiny i ostatecznie na wielkość mikrosfer [15]. Z kolei mikrosfery wy­

konane metodą koacerwacji z zastosowaniem chi­

tozanu jako matrycy polimerowej miały regularną budowę, jednak znacznie większe rozmiary – śred­

nio 1,07 mm [12].

Walorem niniejszej pracy była analiza rozkła­

du wielkości cząstek wykonana metodą dyfrakcji laserowej w analizatorze Mastersizer 3000, której poddano mikrosfery zawierające Eudragit L100­55 w stosunku 1:2. Wielkość cząstek jest jednym z naj­

ważniejszych parametrów charakteryzujących

(8)

postać leku, często decydującym o jego stabilno­

ści, wytrzymałości, a nawet aktywności chemicz­

nej [19]. Wyniki analizy wykazały, że 50% cząstek charakteryzuje się wielkością poniżej 40,3 µm, co wskazuje, że wytworzone mikrosfery spełniają sta­

wiane im wymagania pod względem wielkości.

Otrzymano: 2017.01.09 · Zaakceptowano: 2017.01.25

Piśmiennictwo

1. Balwierz R., Jankowski A.: Znaczenie mikrosfer we współczesnej te­

rapii oraz ich otrzymywanie metodą suszenia rozpyłowego. Farm Pol 2013, 69(6): 375–382.

2. Szymańska E., Winnicka K.: Mikrosfery – nowoczesna postać leku do oczu o kontrolowanym uwalnianiu. Farm Pol 2009, 65(5): 378–389.

3. Płaczek M., Jacyna J., Sznitowska M.: Pozajelitowe formy leków o przedłużonym działaniu. Część II: Mikrosfery i implanty do wstrzy­

kiwań. Polski Merkuriusz Lekarski 2014, 36(211): 54–58.

4. Bauer K. H., Fromming K., Fuhrer C.: Technologia postaci leku z ele­

mentami biofarmacji. Wrocław: Med. Pharm 2012.

5. Jankowski A., Balwierz R., Marciniak D., Łukowiec D., Pluta J.: In­

fluence of spray drying manufacturing parameters on quality of lo­

sartan potassium microspheres. Acta Poloniae Pharmaceutica 2014, 71(5): 833–841.

6. Skupin­Mrugalska P., Kołodziej I., Jankowiak­Gracz H.: Mikrosfery jako środek do embolizacji naczyń krwionośnych i nowoczesny no­

śnik leków. Farm Pol 2015, 71(2): 102–110.

7. Halkiewicz A., Janicki S.: Mikrosfery jako postać leku do podawania pozajelitowego. Farm Pol 1995, 51(19): 836–846.

8. Bodmeier R., Chen H.: Preparation of biodegradable poly(6)lactide microparticles using a spray­drying technique. The Journal of Phar­

macy and Pharmacology 1988, 40(11): 754–757.

9. Enteric & GI targeting formulations. [W:] Felisiak T. red. Eudragit® application guidelines. Darmstadt: Engelhardt und Bauer Druck – und Verlagsgesellschaft mbH. 2009.

10. Lee Ch. J., Nah Ch. S., Saravanan M.: Spray Dried Ispaghula Micro­

spheres Loaded with Aspirin: A Report on Unsuccessful Encapsula­

tion. Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences 2014, 5(6): 1047–1052.

11. Walker H. A Preliminary Study of the Interaction of Acidic and Basic Drugs Using Ethyl Cellulose Microspheres. Praca magisterska; Uni­

wersytet Toledo, 2012.

12. Nascimento A., Laranjeira M. C. M., Fávere V. T., Josué A.: Impregna­

tion and release of aspirin from chitosan/poly(acrylic acid) graft co­

polymer microspheres. Journal of Microencapsulation 2001, 18(5):

679–684.

13. Shi Z., Qian X., Liu Ch., Zhang K.: Aspirin­/TMZ­coloaded Micro­

spheres Exert Synergistic Antiglioma Efficacy via Inhibition of b­ca­

tenin Transactivation. CNS Neuroscience & Therapeutics 2013, 19(2):

98–108.

14. Yang C.­Y., Tsay S.­Y., Tsiang R. C.­C.: Encapsulating aspirin into a surfactant­free ethyl cellulose microsphere using non­toxic so­

lvents by emulsion solvent­evaporation technique. Journal of Mi­

croencapsulation 2001, 18(2): 223–236.

15. Patel B., Modi V., Patel K., Patel M.: Preparation and evaluation of ethyl cellulose microspheres prepared by emulsification – solvent evaporation method. International Journal for Research in Manage­

ment and Pharmacy (IJRMP) 2012, 1(1): 82–91.

16. Año G., Esquisabel A., Pastor M., Talavera A., Cedré B., Fernandéz S., Sifontes S., Aranaguren Y., Falero G., Garciá L., Solís R.L., Pedraz J.L.: A new oral vaccine candidate based on the microencapsulation by spray­drying of inactivated Vibrio cholerae. Vaccine 2011, 29(34):

5758–5764.

17. Esposito E., Roncarati R., Cortesi R., Cervellati F., Nastruzzi C.: Pro­

duction of Eudragit microparticles by spray­drying technique: influ­

ence of experimental parameters on morphological and dimensional characteristics. Pharmaceutical Development and Technology 2000, 5(2): 267–278.

18. Rujivipat S1, Bodmeier R.: Moisture plasticization for enteric Eudra­

git® L30D­55­coated pellets prior to compression into tablets. Eu­

ropean Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics 2012, 81(1):

223–229.

19. Maruszak W., Bodziachowska M.: Zastosowanie automatycznej mi­

kroskopowej analizy w analizie farmaceutycznej. Farm Pol 2010, 66(3): 157–161.

Errata

W numerze 70 (1) „Farmacji Polskiej” w roku 2014, w artykule pt. Błędy związane z wydawaniem leków.

Sytuacja w Polsce i na świecie, autorstwa Piotra Merksa, Michała Byliniaka, Aleksandry Olszewskiej, Krzysztofa Słomiaka, Justyny Kaźmierczak, Katarzyny Szczęśniak, Pawła Węgrzyna i Katarzyny Krupy doszło do pomyłki w przyporządkowaniu poz. 4 i 5 afiliacji. W tekście widnieje w pozycjach:

4 Zakład Higieny, Bioanalizy i Badania Środowiska, Śląski Uniwersytet Medyczny

5 Wydział Farmacji, Uniwersytet Medyczny w Łodzi a powinno być:

4 Wydział Farmacji, Uniwersytet Medyczny w Łodzi

5 Zakład Higieny, Bioanalizy i Badania Środowiska, Śląski Uniwersytet Medyczny Serdecznie przepraszamy za tę nieprawidłowość.

(9)

procesu przechowywania, lekom pediatrycznym sta­

wiane są dodatkowe wymagania, takie jak: możli­

wość dawkowania leku dla dzieci o różnej masie ciała, optymalna dla grupy wiekowej postać leku, akcepto­

walny smak doustnej postaci leku, łatwość podania i bezpieczeństwo zastosowanych substancji pomoc­

niczych [7]. Dodatkowo, w przypadku niektórych pediatrycznych grup wiekowych, w celu właściwe­

go dawkowania należałoby produkować wiele for­

mulacji różniących się mocą substancji czynnej, przeznaczonych dla konkretnych dziecięcych sub­

populacji wiekowych; przy czym dla każdej ze spo­

rządzonych formulacji o różnej mocy należy prze­

prowadzić badania, w tym na ich trwałość podczas przechowywania, co wiąże się z wysokimi kosztami, a przy zawężonym tylko do populacji pediatrycznej rynku jest nieopłacalne dla potencjalnego wytwórcy.

Wstęp

Populacja pacjentów pediatrycznych jest gru­

pą mocno zróżnicowaną pod względem rozwoju fizjologicznego. Istnieje zatem potrzeba bardziej precyzyjnego niż u dorosłych określenia, a następ­

nie podania należnej dawki leku. Wymaga to stwo­

rzenia formy leku umożliwiającej aplikację dawki leku dostosowanej do potrzeb pacjenta pediatrycz­

nego [1]. Najpopularniejsza postać leku dla doro­

słych, jaką jest tabletka, ma tu ograniczone zasto­

sowanie, chociażby ze względu na trudności małych pacjentów w ich połykaniu [2]. Najkorzystniejszy­

mi pod względem dozowania u dzieci są takie po­

stacie leku, jak: roztwory lub zawiesiny. Przeszkodą w ich stosowaniu jest częsty problem z maskowa­

niem smaku substancji czynnej oraz brak stabilno­

ści chemicznej i fizycznej wielu substancji leczni­

czych w roztworach lub zawiesinach. Inną barierą jest trudność zachowania trwałości mikrobiologicz­

nej postaci płynnych, co wiąże się z koniecznością dodawania środków konserwujących [3–6].

Wciąż aktualnym problemem farmakoterapii dziecięcej pozostaje niewystarczająca na rynku liczba gotowych do użycia leków pediatrycznych oraz moc­

no ograniczona liczba badań nad skutecznością i bez­

pieczeństwem wielu leków stosowanych z koniecz­

ności, mimo braku optymalnej formulacji, u dzieci.

Problemy związane z ograniczoną (i to nie tyl­

ko w Polsce) liczbą dedykowanych dla dzieci formu­

lacji, wbrew ogólnemu przeświadczeniu, wynikają z trudności, jakie napotyka przemysł farmaceutycz­

ny skłonny je produkować. Oprócz standardowych wymogów, jakie powinny spełnić wszystkie postacie farmaceutyczne, takich jak np.: odpowiednia biodo­

stępność leku czy trwałość substancji czynnej podczas

The stability study of pharmaceutical dosage formulation with hydrochlorothiazide used in pediatric patients · The aim of this study was the preparation of hydrochlorothiazide suspension in the concentration of 2mg/ml for pediatric patients and assessment of its stability. Ora Blend suspension vehicle was used in preparation of pharmaceutical dosage formulation. HPLC method was used to determine the hydrochlorothiazide stability. Hydrochlorothiazide content in studied formulation was not lower than 90% of baseline value either in room temperature condition or in refrigerator. Suspension was stored in room temperature and also in a refrigerator with temperature of 2–8

°

C.

Performed study demonstrated the suspension stability during six weeks and denoted the possibility of using this pediatric formulation in pharmacy practice.

Keywords: hydrochlorothiazide, suspension, stability, HPLC.

© Farm Pol, 2017, 73(2): 79-83

Badanie stabilności recepturowej formy leku zawierającej hydrochlorotiazyd

do stosowania u pacjentów pediatrycznych

Beata Welk-Piela, Andrzej Stańczak

Zakład Farmacji Szpitalnej, Wydział Farmaceutyczny, Uniwersytet Medyczny w Łodzi

Adres do korespondencji: Beata Welk­Piela, Zakład Farmacji Szpitalnej, Wydział Farmaceutyczny, Uniwersytet Medyczny w Łodzi, ul. Muszyńskiego 1, 90­151 Łódź, e­mail: beata.welk­piela@umed.lodz.pl

(10)

W praktyce problem z brakiem odpowiednich formulacji dla dzieci, z konieczności jest rozwią­

zywany poprzez przygotowanie zarówno w aptece szpitalnej, jak i ogólnodostępnej mniej lub bardziej właściwych formulacji recepturowych. Takie re­

cepturowe formulacje pediatryczne przygotowuje się w aptece, łącząc substancje aktywne i pomocni­

cze lub manipulując lekiem gotowym przeznaczo­

nym dla dorosłych, w celu uzyskania reformulacji zawierających mniejsze dawki albo postaci łatwiej­

sze do podania dziecku [8–10].

Takie stosowane z konieczności rozwiązanie pro­

blemu braku formulacji pediatrycznych ma niestety swoje ograniczenia, które hamują rozwój receptury formulacji pediatrycznych. Do podstawowych ogra­

niczeń należy brak w Polsce regulacji dotyczących substancji czynnych dopuszczonych do stosowania w takich formulacjach, tak samo jak regulacji do­

tyczących badań kontrolnych leku recepturowego.

Brakuje także oficjalnych wytycznych, w których znalazłyby się informacje o sposobie wykonania leku i jego trwałości. W przypadku braku na rynku od­

powiedniej postaci pediatrycznej warunkiem za­

stosowania leku recepturowego (np. zawiesiny lub syropu) powinna być dostępność danych dotyczą­

cych jej przygotowania, bezpieczeństwa, skutecz­

ności i stabilności [7].

Celem pracy było przygotowanie recepturowej formy leku w postaci zawiesiny zawierającej hydro­

chlorotiazyd o stężeniu 2 mg/ml przeznaczonej dla pacjentów pediatrycznych i ocena czasu, przez jaki sporządzony lek może być przechowywany i sto­

sowany w praktyce szpitalnej bez zmiany własno­

ści formulacji. Jako nośnika do uzyskania zawiesiny użyto preparatu Ora­Blend. Trwałość przygotowanej formulacji recepturowej została oceniona po prze­

chowywaniu jej w temperaturze pokojowej oraz po przechowywaniu w lodówce w temperaturze 2–8

°

C.

Badanie pozwoliło na ustalenie wpływu czynników fizycznych, takich jak: światło i temperatura, na sta­

bilność zawiesiny z hydrochlorotiazydem, a tym sa­

mym pozwoliło określić czas, w którym przygoto­

wana zawiesina zachowa swoje własności.

Materiał i metody

Przygotowywano recepturową postać leku o stę­

żeniu hydrochlorotiazydu 2 mg/1ml. Substancja czynna pochodziła z gotowego produktu leczniczego Hydrochlorothiazidum Polpharma, tabletki 25 mg, produkcji Zakładów Farmaceutycznych Polpharma S.A. Do sporządzenia formulacji użyto dietetycznego środka spożywczego specjalnego przeznaczenia me­

dycznego Ora­Blend firmy Perrigo Minneapolis, USA, stosowanego w świecie jako gotowa podstawa do uzy­

skania zawiesiny mającej na celu zapewnienie odpo­

wiedniego stopnia rozproszenia substancji aktywnej.

Przygotowaną formulację podzielono na 2 grupy różniące się warunkami przechowywania.

Oznaczenia zawartości hydrochlorotiazy­

du w przygotowanej formulacji podczas przecho­

wywania dokonywano techniką wysokosprawnej chromatografii cieczowej (HPLC).

Przygotowanie formulacji farmaceutycznej

Do moździerza przeniesiono 20 tabletek o de­

klarowanej zawartości 25 mg produktu lecznicze­

go Hydrochlorodiazidum i dokładnie roztarto. Od­

mierzono 250 ml Ora Plus. Do uzyskanego proszku dodano niewielką ilość fazy rozpraszającej do otrzy­

mania gęstej pasty, a następnie stopniowo doda­

wano fazy rozpraszającej i mieszano do uzyskania płynnej postaci. Zawiesinę przeniesiono do kolby miarowej o pojemności 250 ml. Moździerz prze­

płukano resztą fazy rozpraszającej, która posłużyła dalej do uzupełnienia do kreski zawiesiny w kolbie miarowej. Następnie tak przygotowaną formulację dokładnie wymieszano i przeniesiono do oranżo­

wych butelek aptecznych i oznakowano.

Badanie trwałości

przygotowanej formulacji

Aby można było ocenić trwałość przygotowanej formulacji farmaceutycznej zawierającej hydrochlo­

rotiazyd i przydatność takiego sposobu postępowa­

nia w rutynowym jej przygotowaniu w warunkach apteki szpitalnej, należy określić zarówno warunki, w jakich może być przechowywana taka postać re­

cepturowa, jak i wyznaczyć czas, w jakim może być ona przechowywana bez utraty aktywności. Ponie­

waż okres przydatności związany jest z utrzymywa­

niem się aktywności substancji czynnej, a ta z ko­

lei zależy bezpośrednio od zmian ilości substancji czynnej podczas procesu przechowywania, analizę należy przeprowadzić poprzez ocenę czasu utrzy­

mywania się nominalnej ilości substancji czynnej wyznaczonej dla składu i warunków przechowy­

wania dla sporządzonych zawiesin.

Przygotowane i oznakowane butelki z zawiesi­

ną zostały podzielone na 2 grupy zróżnicowane pod względem warunków przechowywania w celu oceny jakości oraz trwałości w zależności od temperatury i dostępu światła. Pierwsza grupa została umieszczo­

na w warunkach temperatury pokojowej i normal­

nego oświetlenia, aby móc ocenić wpływ światła na trwałość formulacji. Drugą grupę przechowywano w lodówce w temperaturze 2–8

°

C w celu spraw­

dzenia wpływu temperatury na badaną formulację.

Przygotowanie roztworów wzorcowych Do analizy użyto wzorców hydrochlorotiazy­

du (Hydrochlorothiazydum – Sigma Aldrich) oraz acebutololu (Acebutololum – Sigma Aldrich), jako

(11)

standardu wewnętrznego. Przygotowano metano­

lowe roztwory wzorcowe tych substancji o stęże­

niu 1 mg/ml.

Przygotowanie roztworu roboczego Aby określić optymalne warunki rozdziału chro­

matograficznego i ilościowego oznaczenia hydro­

chlorotiazydu, przygotowano roztwór roboczy o określonym stężeniu. By zapewnić właściwe stę­

żenie roztworu roboczego, do kolbki miarowej o po­

jemności 20 ml z roztworów wzorcowych pobrano 40 µl hydrochlorotiazydu i 80 µl acebutololu (jako standardu wewnętrznego) i uzupełniono do kreski fazą ruchomą, stanowiącą mieszaninę metanolu:

wody: 1N roztworu kwasu solnego w stosunku ob­

jętościowym 220:780:0,2. Tak przygotowany roz­

twór zawierał hydrochlorotiazyd o stężeniu 2 µg/ml.

Zastosowanie standardu wewnętrznego (acebuto­

lol) do ilościowego oznaczania hydrochlorotiazydu w przygotowanej formulacji pediatrycznej podyk­

towane było potrzebie zapewnienia jak największej selektywności i precyzji oznaczeń substancji ak­

tywnej. Na kolumnę chromatograficzną nanoszono 50 µl tak przygotowanego roztworu.

Przygotowanie badanych próbek

Do kolbki miarowej o pojemności 20 ml pobiera­

no 20 µl próbki badanej (sporządzonej zawiesiny), dodawano 80 µl roztworu standardu wewnętrz­

nego o stężeniu 200 ng/50 µl, a następnie wymie­

szano i uzupełniano do kreski fazą ruchomą, uzy­

skując w ten sposób roztwór zawierający 100 ng hydrochlorotiazydu w 50 µl. Na kolumnę chroma­

tograficzną nanoszono 50 µl tak przygotowane­

go roztworu.

Oznaczanie hydrochlorotiazydu w próbkach

Oznaczenie zawartości hydrochlotothiazy­

du w próbkach przechowywanych w temperatu­

rze pokojowej i lodówce w temperaturze 2–8

°

C

wykonano techniką wysokosprawnej chromato­

grafii cieczowej (HPLC), z użyciem chromatografu cieczowego VARIAN wyposażonego w pompę gra­

dientową, detektor UV­VIS (190–900 nm) i au­

tomatyczny podajnik próbek. Zastosowano ko­

lumnę C18 250 mm × 4,6 mm 5 µm, prekolumnę C18 20 mm × 4,0 mm 5 µm. Szybkość przepływu analitu wynosiła 1,4 ml/min. Pomiarów dokony­

wano w świetle nadfioletowym przy długości fali λ=220 nm.

Wyniki

Badanie trwałości było prowadzone przez 6 tygo­

dni od dnia wykonania roztworu. Próbki z przygo­

towanych formulacji farmaceutycznych pobierano

w dniu przygotowania oraz po 2, 4, 7 dniach, oraz 2, 3, 4 i 6 tygodniach od sporządzenia zawiesiny.

Czynności pobierania próbek i oznaczania powta­

rzano trzykrotnie w ciągu dnia. Oznaczanie pobra­

nych próbek wykonano w sposób opisany powyżej.

Chromatogramy wzorca i próbek badanych wyko­

nanych po przygotowaniu formulacji i po 2 dniach od jej sporządzenia przedstawiają ryciny 1, 2, 3.

Obliczone wartości stężeń w czasie w oznaczonych próbkach przedstawia tabela 1.

Rycina 2. Chromatogram próbki badanej przechowywanej w lodówce (w dniu sporządzenia formulacji)

Rycina 1. Chromatogram roztworu wzorcowego

hydrochlorothiazydu (HCT) oraz acebutololu, jako standardu wewnętrznego (IS)

(12)

Omówienie

Celem badań było sporządzenie i ocena trwa­

łości substancji leczniczej podczas przechowy­

wania, sporządzonej w warunkach apteki szpital­

nej formulacji pediatrycznej. Odpowiednia jakość takiego leku, w tym jego trwałość, jest jednym z warunków bezpiecznej i skutecznej farmakotera­

pii. Produkty rozkładu substancji leczniczej mogą w najlepszym przypadku powodować brak aktyw­

ności farmakologicznej albo, co gorzej, wywoływać działania niepożądane. Jest to szczególnie niebez­

pieczne w przypadku postaci leku przeznaczonej dla pacjenta pediatrycznego. Hydrochlorotiazyd to szeroko stosowany lek moczopędny, z grupy tia­

zydów, wykorzystywany m.in. w obrzękach róż­

nego pochodzenia i w nadciśnieniu tętniczym. Na polskim rynku farmaceutycznym nie ma posta­

ci leku zawierającej tę substancje czynną o mocy

odpowiedniej dla dziecka. Wiąże się to z koniecz­

nością sporządzania leków recepturowych, szcze­

gólnie w szpitalach pediatrycznych, w których hydrochlorotiazyd jest często stosowany. Duże znaczenie ma wybór właściwej postaci leku. Po­

winna ona zapewnić dokładne dozowanie przy­

gotowanej formulacji, stąd za odpowiednią postać leku dla dzieci uznano zawiesinę przygotowaną w przypadku tego badania na bazie preparatu Ora Plus, pełniącego rolę fazy rozpraszającej, zapew­

niającej odpowiednią trwałość mikrobiologicz­

ną zawiesiny oraz właściwe parametry organo­

leptyczne. Badanie trwałości substancji aktywnej wymaga z kolei także dobrania odpowiedniej me­

tody analitycznej, pozwalającej oznaczyć jej za­

wartość w badanej próbie, w której oprócz sub­

stancji leczniczej jest wiele związków pełniących rolę substancji pomocniczych składających się na formulację. Według danych literaturowych metodą z wyboru jest w takich sytuacjach wysokospraw­

na chromatografia cieczowa (HPLC). Kryterium trwałości chemicznej leku jest rozkład substan­

cji aktywnej nieprzekraczający 10% początkowej zawartości. Przeprowadzone badania nie wyka­

zały istotnych zmian stężenia hydrochlorotiazydu w zawiesinach przez 6 tygodni od momentu przy­

gotowania formulacji. Zawartość hydrochlorotia­

zydu w sporządzonej zawiesinie przechowywanej w lodówce nie spadła poniżej 93,5%, a w prze­

chowywanej w temperaturze pokojowej nie spa­

dła poniżej 94% w stosunku do wartości począt­

kowej (ryciny 1, 2, 3, tabela 1).

Wnioski

Z przeprowadzonego badania wynika, że:

­ hydrochlorotiazyd wykazuje znaczną trwałość chemiczną w badanych zawiesinach;

­ przeprowadzone oznaczenia nie wykazały istot­

nych zmian stężenia hydrochlorotiazydu podczas 6­tygodniowego przechowywania, zarówno w temperaturze pokojowej, jak i w temp. 2–8

°

C;

Czas Próbka przechowywana w lodówce (2-8

°

C) Próbka przechowywana w temperaturze pokojowej Stężenie [mg/ml] Zawartość substancji czynnej [%] Stężenie [mg/ml] Zawartość substancji czynnej [%]

0 1,99 99,5 1,99 99,5

2 dni 1,96 98,0 1,94 97,0

4 dni 1,96 98,0 1,94 97,0

7 dni 1,94 97,0 1,94 97,0

2 tyg. 1,94 97,0 1,91 95,5

3 tyg. 1,93 96,5 1,91 95,5

4 tyg. 1,87 93,5 1,90 95,0

6 tyg. 1,87 93,5 1,88 94,0

Tabela 1. Obliczone stężenia substancji czynnej w oznaczanych próbkach w czasie trwania badania Rycina 3. Chromatogram próbki badanej przechowywanej w temperaturze

pokojowej (w dniu sporządzenia formulacji)

(13)

­ trwałość chemiczna zawiesin z hydrochlorotia­

zydem o stężeniu 2 mg/ml w opracowanym skła­

dzie wskazuje na możliwość sporządzania tej pe­

diatrycznej formulacji recepturowej w aptece i przechowywania jej w aptece lub na oddzia­

le przez 6 tygodni od momentu przygotowania, bez zmiany jej własności.

Praca powstała w ramach działalności statutowej Zakładu Farmacji Szpitalnej Uniwersytetu Medycz- nego w Łodzi (nr 503/3-011-03/503-31-001).

Otrzymano: 2016.12.28 · Zaakceptowano: 2017.01.15

Piśmiennictwo

1. Zajicek A., Fossler M.J., Barrett J.S. i wsp.: A report from the pedia­

tric formulations task force: perspectives on the state of child­frien­

dly oral dosage forms. The AAPS Journal 2013, 15: 1072–1081.

2. Muśko M., Sznitowska M.: Postacie leków pediatrycznych. Część I.

Wymagania i podstawowe problemy – dawkowanie, połykanie, smak.

Farm Pol 2010, 66: 215–220

3. Muśko M.: Postacie leku stosowane w praktyce pediatrycznej. Gaze­

ta Farmaceutyczna. 2010, 1: 34–37.

4. Kurczewska U., Szeligowski M., Orszulak­Michalak D.: Doustne po­

stacie leków stosowane u dzieci. Farm Pol 2008, 64: 975–986.

5. A. Lajoinie A., Henin E., Kassai B.: Oral formulation of choice for chil­

dren. Arch. Pediatrie 2015, 22: 877–885, http://www.sciencedirect.

com/science/article (stan z 23.09.2016).

6. Preis M., Grother L., Philip Axe P. i wsp.: In­vitro and in­vivo eva­

luation of taste­masked cetirizine hydrochloride formulated in oral lyophilisates. Int. J. Pharm. 2015, 491: 8–16.

7. Kuentz M., Holm R., Elder D.P.: Methodology of oral formulation se­

lection in the pharmaceutical industry. Eur. J. Pharm. Sci. 2016, 87:

136–163.

8. Lajoinie A., Henin E., Nguyen K.A. i wsp.: Oral drug dosage forms ad­

ministered to hospitalized children: Analysis of 117,665 oral admi­

nistrations in a French paediatric hospital over a 1­year period. Int.

J. Pharm. 2016, 500: 336–344.

9. Stanisz B.J., Paszun S.K., Zalewska A: Stability of cilazapril in pedia­

tric oral suspensions prepared from commercially available tablet do­

sage forms. Acta Poloniae Pharmaceutica – Drug Research 2014, 71:

661–666.

10. Pabari R.M., McDermott C., Barlow J., Ramtoola Z.: Stability of an alternative extemporaneous captopril fast­dispersing tablet formu­

lation versus an extemporaneous oral liquid formulation. Clin Ther.

2012, 34: 2221–2229.

(14)

że będzie również wprowadzać nowe obowiązki i zadania dla personelu aptek, których głównym zadaniem będzie poprawa bezpieczeństwa pacjen­

tów [3].

Mimo stale wzrastającej liczby badań nauko­

wych mających na celu określenie stopnia świa­

domości zagrożeń związanych ze sfałszowanymi produktami leczniczymi, pewne obszary wiedzy pozostają poznane w niewystarczającym stopniu.

Jeden z najbardziej istotnych obszarów wyma­

gających gruntownej refleksji naukowej dotyczy opinii pacjentów na temat leków sfałszowanych wśród mieszkańców terenów wiejskich oraz ma­

łych miast (do 20 tys. mieszkańców). Opinia pa­

cjentów na temat zagrożeń związanych ze zja­

wiskiem fałszowania leków może różnić się istotnie w zależności od wieku, poziomu wy­

kształcenia, posiadanych kompetencji zdrowot­

nych czy w szerszym kontekście – od poziomu health literacy [4, 5]. Mając na uwadze, że popu­

lacje wymienione powyżej charakteryzuje niższy poziom wykształcenia oraz starzejąca się struktu­

ra wiekowa, nasze badanie ma nie tylko wydźwięk teoretyczny – czysto naukowy, ale również cha­

rakter praktyczny.

Podstawowymi celami naszego badania było:

i) określenie poziomu wiedzy pacjentów na temat leków sfałszowanych, zarówno w skali globalnej, jak i polskiej;

ii) zbadanie poziomu świadomości pacjentów zwią­

zanego z kupowaniem leków przez internet. Ba­

danie ma charakter projektu pilotażowego, tzn.

jednym z celów było zbadanie akceptowalności narzędzia (kwestionariusza), który zostanie wy­

korzystany do dalszych bardziej reprezentatyw­

nych badań.

Wstęp

Polska jako kraj „graniczny” Unii Europejskiej pozostaje ważnym elementem światowego łańcu­

cha dystrybucji sfałszowanymi produktami lecz­

niczymi, szczególnie w kontekście leków stoso­

wanych w terapii chorób sercowo­naczyniowych, leków przeciwdepresyjnych oraz używanych w za­

burzeniach erekcji. Skala zjawiska pozostaje niedo­

szacowana, w szczególności brakuje informacji na temat sfałszowanych produktów leczniczych do­

stępnych w legalnym łańcuchu dystrybucji. Mimo wzmożonych działań i wysiłków ze strony policji, organów ścigania oraz prawodawcy, świadomość zagrożeń związanych ze stosowaniem sfałszowa­

nych leków pozostaje niewystarczająca wśród pa­

cjentów w Polsce [1].

Zagadnienie to jest szczególnie aktualne w kon­

tekście działań Komisji Europejskiej mających na celu zmniejszenie zagrożeń związanych z lekami sfałszowanymi dostępnymi w aptekach ogólnodo­

stępnych oraz szpitalnych, jak również uszczelnie­

nie legalnego łańcucha dystrybucji. Dyrektywa ds.

leków sfałszowanych (Falsified Medicines Direc- tive, FMD) oraz akty delegowane do Dyrektywy (przepisy wykonawcze) stanowią wyzwanie dla sys­

temów ochrony zdrowia krajów członkowskich Unii Europejskiej (UE) i są odpowiedzią na stale rosnącą liczbę sfałszowanych leków [2]. Z punktu widzenia praktyki aptecznej, autentyfikacja, tj. weryfikacja autentyczności produktu leczniczego w momencie jego dyspensowania jest wyzwaniem dla apteka­

rzy. Dyrektywa ds. leków sfałszowanych rozszerzać będzie zakres usług farmaceutycznych dostępnych w polskich aptekach i prowadzić będzie do rozwo­

ju opieki farmaceutycznej. Podkreślić należy jednak,

Leki sfałszowane w opinii pacjentów polskich aptek – jednoośrodkowe badanie pilotażowe

Emilia Szyling

1

, Damian Świeczkowski

2

, Urszula Włodarczak

1

, Miłosz J. Jaguszewski

2

, Jerzy Krysiński

1

, Piotr Merks

1

1 Katedra Technologii Postaci Leku, Collegium Medicum w Bydgoszczy, Uniwersytet Mikołaja Kopernika w Toruniu

2 I Katedra i Klinika Kardiologii, Gdański Uniwersytet Medyczny

Adres do korepondencji: Piotr Merks, Katedra Technologii Postaci Leku, Collegium Medicum w Bydgoszczy, Uniwersytet Mikołaja Kopernika w Toruniu, ul. Dr A. Jurasza 2, 85­089 Bydgoszcz, e­mail: piotrmerks@gmail.com

Cytaty

Powiązane dokumenty

wonoidy mogą poprawiać pamięć i uczenie się nie tylko poprzez opóźnianie starzenia się neuronów, ale również wpływ na neurogenezę w

bieg włókien ograniczających zraziki tłuszczowe jest skośny w stosunku do powierzchni skóry właściwej, przy ściskaniu skóry adipocyty ślizgają się jeden po drugim, z

go leku lub stwierdzenia jego nieskuteczności lekarz może korzystać z innych leków, o ile ich stosowanie jest zgodne ze wskazaniami aktualnej wiedzy

U pacjentów pediatrycznych w przypadku silnie emetogennych cytostatyków zaleca się profilaktykę opartą na połączeniu antagonisty receptora 5­HT 3, deksametazonu i

wiązek nadzorowania przez państwa członkowskie wytwórców substancji czynnych przeznaczonych do wytwarzania produktów leczniczych dla ludzi, a także dystrybutorów takich

jowych jest dobrze znany, to jednak ze względu na pojawianie się nowych substancji spełniających kryteria toksyn mocznicowych, wymagane są cią­. głe badania

czeństwo pacjentów zalicza się także możliwość identyfikacji i lokalizacji leku, aż do momentu jego podania, co w przypadku decyzji o wstrzymaniu, wycofaniu z obrotu,

Biorąc pod uwagę zasadę racjonalności ustawodaw- cy posłużenie się przezeń odmiennymi pojęciami, tj. „niewydawania zezwolenia” i „odmową udzielenia zezwolenia”,